Стерилизация мед изделий: Медицинская стерилизация с использованием ионизирующего излучения

Содержание

Услуги стерилизации медицинских изделий

Наша компания оказывает услуги по стерилизации медицинских изделий окисью этилена, паровой стерилизации, стерилизации ионизирующим излучением (радиационной стерилизации). Газовая стерилизациия оксидом этилена особенно востребована среди тех производителей, чья продукция чувствительна к температурному воздействию (стерилизация таких изделий проводится при температуре 37С), а также среди тех, чья продукция не выдерживает иные виды стерилизации (электронные медицинские изделия, биорезорбируемые изделия, медицинские изделия с покрытием). Паровая стерилизация — самый распостраненный вид стерилизации, и тем не менее, требовательный к водоподготовке, качеству и состоянию стерилизационного оборудования. Радиационная стерилизация незаменима для некоторых видов изделий, например для жидких или порошкообразных, в герметичной упаковке.

Стерилизационный центр СтериПак Сервис

Лаборатория центра оснащена уникальным стерилизационным оборудованием 3М™ Steri-Vac™ 5XL и 3М™ Steri-Vac™ 8XL, а также системами контроля качества стерилизации производства 3М, США.

Производителям изделий медицинского назначения

Услуги газовой стерилизации этиленоксидом изделий медицинского назначения для производителей медицинских изделий небольшого объема. Работа с небольшими партиями. Срок выдачи стерильных изделий от 2-х дней.

Клиникам и частным медицинским центрам

Услуги стерилизации и обработки инструментов, услуги низкотемпературной газовой стерилизации эндоскопов, артроскопов, световодов, электродов, дренажей и других термо- и влагочувствительных изделий, не выдерживающих паровой метод стерилизации.

Газовая оксидом этилена

Газовая стерилизация оксидом этилена — один из химических методов стерилизации изделий медицинского назначения, применяется в тех случаях, когда необходимо исключить воздействие на продукт высоких температур и повышенной влажности. Стерилизующим агентом является этиленоксид, который за счет алкилирующего действия подавляет РНК микроорганизмов.

Паровая

Стерилизация медицинских изделий – рутинная необходимость в медицинских учреждениях, как государственных, так и частных. На метод стерилизации паром приходится около 70 % всей номенклатуры стерилизуемых медицинских изделий, что обусловлено эффективностью метода, безопасностью, доступностью и широким выбором оборудования.

Плазменная стерилизация парами перекиси водорода

Стерилизацию парами перекиси водорода разные группы исследователей относят как к дезинфекции высокого уровня, так и к низкотемпературным методам стерилизации. Бесспорным преимуществом плазменной стерилизации является короткое время цикла стерилизации. К недостаткам же можно отнести, что этот метод стерлизации является окисляющим.

Гамма излучением

Радиационная стерилизация – способ инактивации жизнеспособных микроорганизмов с помощью потоков частиц, способных ионизировать вещество. Этот метод используется как правило в промышленных масштабах для стерилизации косметического сырья, изделий медицинского назначения, фармацевтических препаратов. Для гамма-стерилизации предназначены радиационно-технологические установки, использующие в качестве источника излучения радиоактивные нуклиды химических элементов, например, кобальт-60

Электронно-лучевая

Электронно-лучевая стерилизация – один из физических методов стерилизации медицинских изделий, готовой продукции, сырья, позволяющий обработать за короткое время большой объем продукции. При электронном-лучевом способе стерилизации пучок электронов повреждает ДНК микроорганизмов.

Радиационная стерилизация медицинских изделий

На выбор метода стерилизации влияют такие свойства медицинского изделия, как состав, термостабильность или термолабильность, переносимость повышенной влажности, устойчивость к перепадам давления. Также проводится оценка упаковки – она не должна препятствовать проникновению стерилизующего агента. Ионизирующее излучение в качестве метода стерилизации выбирается производителем только при отсутствии негативного влияния на медицинское изделие.

Услуги по стерилизации медицинских изделий, стерилизация изделий медицинского назначения

Услуги по стерилизации медицинских изделий (шприцы, перчатки, катетеры и т.п.) — одно из основных направлений

OOO «Стерин». Так же возможна стерилизация упакованных продуктов питания (например, специй и т.п.). Объем камеры немецкой фирмы METZ MANNHEIM, которую использует наша компания, — 26 куб.м. Время цикла стерилизации 9 часов. Ведется контроль параметров стерилизации с сохранением данных в архиве. Выпуск продукции осуществляется по контролю химических и биологических индикаторов.

Мы готовы работать на взаимовыгодных условиях и оказывать своим клиентам услуги по стерилизации этилен-оксидом более чем 200 наименований изделий медицинского назначения, используя камеру и технологию немецкой фирмы METZ MANNHEIM. Преимущества такого метода стерилизации в том, что этилен-оксидан обладает фунгицидным, бактерицидным и спороцидным действием. По сравнению с другими методами, этилен-оксидановая стерилизация не вызывает коррозии металла, не портит изделия медицинского назначения, изготовленные из полимерных материалов, а также является наиболее доступным способом, готовым гарантированно обеспечить высокую степень стерилизации.

Большим преимуществом любого метода стерилизация изделий медицинского назначения является автоматизированность проведения. К примеру, при использовании методов дезинфекции необходимо соблюдать многие субъективные параметры, поэтому большинство медицинских учреждений предпочитает воспользоваться услугами по стерилизации медицинских изделий.

На сегодняшний день развитие медицинской техники требует разработки новых методов стерилизации, так как многие хирургические инструменты с микронной заточкой или изготовленные на основе пластмасс, не в состоянии выдержать температуру пара или воздуха, при которой проходит стерилизация изделий. К тому же стерилизацию изделий стоит проводить в строгом соответствии с предусмотренными режимами, а также соблюдать сроки хранения стерилизованных материалов и изделий.

По всем вопросам стерилизации изделий медицинского назначения обращайтесь к специалистам нашей компании «Sterin Medical Group». Кроме того, мы предлагаем воспользоваться услугами:

Доставка груза автотранспортом нашего предприятия

Возьмем любой заказ, независимо от объема
Выполнение и отгрузка заказа точно в срок
Демократичная ценовая политика
Высокое качество оказания услуг по стерилизации изделий медицинского назначения

Стерилизация медицинских изделий | ABM Technology

Одно из важных потребительских свойств качественно изготовленного протетического имплантата – его абсолютная стерильность в упаковке. Это, во-первых, удобно, ведь имплантат прямо из упаковки готов к применению (установке). Во-вторых, не требует от практикующего хирурга затрат времени и усилий на самостоятельную стерилизацию имплантата перед хирургической операцией. Ну, и третье – в фабричных условиях обеспечивается такое качество стерилизации, которое в условиях медицинского кабинета практически не достичь. Что само по себе дает хорошие гарантии успешности приживления имплантата к живой ткани.

Стерилизация наших медицинских изделий, в первую очередь имплантатов, обеспечение их готовности к немедленному применению – одна из производственных задач, успешно решаемых производством АВМ Technology. Для этого практически готовые имплантаты, изготовленные и предварительно упакованные в «чистой комнате», проходят этап завершающей стерилизации. Стерилизация нашей продукции производится лучевым способом, на специализированном оборудовании промышленного класса.

Целью такого завершающего этапа обработки является уничтожение любой микробной и бактерицидной среды на контактных поверхностях имплантатов, устранение предпосылок для ее появления и распространения при их последующей транспортировке и хранении, на протяжении всего гарантийного срока.

Имплантаты АВМ Technology помещаются в аппарат лучевой стерилизации прямо в герметичной упаковке, в которую они были помещены в «чистой» комнате, и больше из нее не вынимаются, до момента применения по назначению. Такой режим обращения с имплантатами гарантирует полное сохранение ими потребительских свойств, полученных на этапе стерилизации.

Непосредственно в процессе бактерицидной стерилизации медицинских изделий АВМ Technology производится их облучение жестким радиоактивным (ионизирующим) гамма-излучением, до получения ими дозы поглощенного излучения в 15 – 25 КилоГрей (КГр). Такой дозы поглощенного излучения обычно гарантированно достаточно для достижения абсолютной бактерицидной стерильности их контактных поверхностей, в полном соответствии с высокими отраслевыми стандартами качества. Но это просто выглядит только на словах. Сам процесс лучевой стерилизации достаточно затратный по времени, облучение каждой партии занимает в среднем целые сутки. Специализированное оборудование для лучевой обработки – достаточно сложное, сильно регламентированное в обращении и обслуживании, в вопросах лицензирования. Факт прохождения медицинским изделием (партией) полной лучевой стерилизации контролируется дозиметрами, и в обязательном порядке подтверждается прикладываемым сертификатом.

Но даже после прохождения медицинскими изделиями лучевой стерилизации, контроль качества их состояния у нас не прекращается. После возвращения очередной партии стерилизованных имплантатов, из нее производится отбор нескольких образцов, на которых в лаборатории выполняется проверка качества проведенной стерилизации.

Централизованная стерилизационная — ЦКБ УДП РФ

Централизованная стерилизационная обеспечивает обработку и стерилизацию медицинских изделий лечебно-диагностических отделений ФГБУ «Центральная клиническая больница с поликлиникой» Управления делами Президента РФ и ряда других медицинских учреждений.

Мы также оказываем услуги по стерилизации медицинских изделий на коммерческой основе:

газовая стерилизация медицинских изделий;
паровая стерилизация медицинских изделий;
стерилизация медицинских изделий: от хирургических инструментов, биксов до электронных устройств.

Преимущества работы с Централизованной стерилизационной ЦКБ:

мы гарантируем высокое качество оказания услуг по стерилизации медицинских изделий: за все годы работы мы не получили ни одной жалобы на качество стерилизации,
- бактериологический контроль стерилизации с использованием современных биологических индикаторов проводится в соответствии с европейскими стандартами не реже 1 раза в 2 недели,
- при стерилизации изделий с высоким риском контаминации мы контролируем каждый цикл стерилизации биологическими индикаторами, получая подтверждение через 48 часов.
Для стерилизации продукции мы используем оборудование 2018 года выпуска: паровые стерилизаторы Steelco VS12, газовые Steri-Vac 5XL и Steelco VS 8/2 F, плазменный STERRAD 100 NX;
Мы полностью автоматизировали процесс стерилизации, тем самым исключив риск влияния человеческого фактора;
Наши цены на услуги по стерилизации медицинских изделий среднерыночные, однако, чем больше ваш заказ, тем ниже наши цены.

В 2018 году мы полностью обновили основное оборудование Централизованной стерилизационной, оснастив ее пятью автоматическими моюще-дезинфицирующими машинами Steelco DS 610/2 SL проходного типа, с объемом камеры 250 л, которые позволяют качественно выполнять предстерилизационную обработку медицинских изделий.

В центральной стерилизационной мы используем полный спектр применяемых в медицинских учреждениях методов стерилизации, вы можете выбрать оптимальный способ, исходя из требований производителя конкретного медицинского изделия.

1. термический паровой метод (4 стерилизатора Steelco VS12 H/2)

2. низкотемпературные методы:

газовый этиленоксидный (4 стерилизатора Steri-Vac 5XLDP),
паро-формальдегидный (Steelco VS 8/2 F),
плазменный (STERRAD 100 NX).

Для упаковки медицинских изделий, в основном, мы используем комбинированную упаковку SteriClin и Клинипак, состоящую из растительного пергамента и прозрачного пленочного ламината (полипропилен/полиамид). Такая упаковка обеспечивает надёжную стерилизацию, легкую идентификацию изделий, оперативный контроль, гарантирует сохранность стерильности при длительном хранении обработанных изделий.

Мы используем специальную систему мероприятий по контролю стерилизации. Контролю подвергаются все эксплуатируемые в отделении моечные автоматы, паровые, газовые и плазменные стерилизаторы по всем используемым режимам в соответствии с требованиями нормативно-методических документов.

Контакты:

Заведующий централизованной стерилизационной Ливинский Юрий Владимирович, тел. +7 (495) 530-05-75

Старшая медицинская сестра Аболяева Елена Фаэковна, тел. +7 (495) 530-00-82

Контрактная служба тел. +7 (495) 530-04-79

Стерилизация одноразовых пластмассовых изделий мед. назначения

Производство одноразовой стерильной продукции медицинского назначения будет выгодно с нами. Мы предоставляем услуги стерилизации изделий:

из нетканого материала;
из пластика;
комбинированных изделий сложной конструкции.

Этапы стерилизации одноразовых медицинских изделий

Основные этапы стерилизации медицинских изделий газовым методом:

Предварительная подготовка в виде очистки, продувания воздухом и упаковки изделий.
Инструменты и другие медицинские изделия укладывают в стерилизатор, проводят воздействие оксидом этилена в течение нескольких часов.
Дегазация – проветривание с целью избавиться от остатков газа и побочных химических продуктов.

В качестве проверки изделия выборочно тестируют на наличие микробов, чтобы не допустить попадания в продажу некачественного продукта. Хранение и доставка стерильного продукта также выполняется в соответствии с требованиями СанПиНа.

Преимущества газовой стерилизации в сравнении с другими видами

Для стерилизации одноразовых изделий медицинского назначения используют физические и химические методы.

К физическим относят:

Термическое воздействие паром и в условиях повышенного давления в автоклаве или сухим горячим воздухом.
Радиационное – электронное, гамма и X-излучение.

Для газовой стерилизации чаще всего используют оксид этилена. Это химический метод. Его выбирают для изделий, чувствительных к высокой температуре, например, для резиновых одноразовых перчаток, контейнеров для анализов.

Пористые продукты такие как салфетки, бинты, вата, гинекологические комплекты, могут содержать после стерилизации остатки оксида этилена. Поэтому необходима качественная аэрация после их обеззараживания. Для изделий из пластмассы (шприцы, системы) этот риск приближается к нулю.

К преимуществам газового метода можно отнести экономичность. Он гораздо менее затратный, чем радиационный, проще оборудование. По сравнению с термической газовая стерилизация подходит почти для любых изделий, особенно чувствительных к температуре и влажности. Газ щадяще действует на материалы, не уменьшая их срок годности, прочность.

Стерилизуют медицинские товары прямо в упаковке. При этом уничтожаются не только активные формы микроорганизмов, но и споры, вирусы. Температуру выдерживают от 30 до 60 градусов в зависимости от типа медицинских изделий, влажность выше 30 %. Концентрация газа от 200 до 800 мг/ л.

Результат – стерильная упаковка и ее содержимое. Это возможно благодаря тому, что молекулы газа обладают высокой проникающей способностью. Поэтому даже изделия сложной формы эффективно очищаются со всех сторон. Кроме того, газ не вызывает коррозии металлов и не влияет на качество пластмассовых изделий. Современные газовые стерилизаторы используют во всем мире, включая страны Европы, США.

Осторожность требуется в процессе газовой стерилизации, так как оксид этилена взрывоопасен. Сотрудники обучены правилам безопасности, соблюдают технологию в ходе промышленной стерилизации.

Изделия и инструменты, с которыми мы работаем

90 % всех медицинских изделий можно подвергать газовой стерилизации:

Тканевые изделия – одноразовое белье, одежда (костюмы, маски, шапочки, бахилы, фартуки, нарукавники, халаты, брюки, туники, комбинезоны, накидки для посетителей), готовые комплекты для акушерства, гинекологии, травматологии, нейрохирургии, роддомов, детских отделений. Материалы, из которых изготовлено белье и одежда, – айрлайд, медикейс, акваспан, спанбонд, СМС. Одежда из СМС защищает не только от проникновения микробов, но также от пыли, щелочей, кислот. При этом все изделия хорошо пропускают воздух, не содержат ворса. Такие пеленки и простыни препятствуют возникновению пролежней, попаданию ниток и пыли в раны.
Металлические инструменты – скальпели, иглы, изделия из титана.
Пластмассовые одноразовые шприцы, системы, катетеры, изделия из полимерных смол, резины.
Электронные приборы, в том числе крупногабаритные, аппараты, оптические волоконные системы.

Около 70 % всей стерилизованной продукции проходит обработку газом. Из одноразовых изделий – это больше половины всех товаров.

Цена и преимущества компании

Компания специализируется на газовой стерилизации. Многолетний опыт работы и современное оборудование, профессионализм сотрудников – залог качества готовой продукции. При заказе больших партий цена намного выгоднее. Многие производители предпочитают постоянное сотрудничество с проверенным поставщиком услуг. В этом случае можно быть уверенным не только в качестве стерилизации, но и в хранении, доставке готовых изделий, соблюдении сроков.

Стерилизация одноразовых пластмассовых изделий медицинского назначения газовым методом – надежный и экономически выгодный метод, особенно при крупных оптовых заказах. Он практически не имеет ограничений в отличии от парового, пользуется большим спросом. Лечение с использованием таких инструментов и изделий безопасно в плане инфицирования. Также мы оказываем услугу валидации процесса стерилизации медицинских изделий для документального подтверждения стерильности ваших изделий.

Обращайтесь – и ваш медицинский товар будет гарантировано очищен от всех возможных форм микробов.

Выбор метода низкотемпературной стерилизации для мед. изделий

«Выбор метода низкотемпературной стерилизации»

П.А. Демидов,

Городская клиническая больница №4 ДЗ города Москвы, ММУ №8

На сегодняшнем, бурно развивающимся, рынке медицинских изделий (МИ) многократного применения существует большое количество изделий, стерилизация которых высокотемпературными методами недопустима. Невозможность стерилизации этих МИ определяется конструкцией их и применяемых при их изготовлении материалов (пластик, цветные металлы, стекло в металлических обрамлениях и т.д.), их физико-химическими свойствами, различными коэффициентами теплового расширения. Эта группа МИ носит общее название — термолабильные изделия.

К этим изделиям относятся следующие МИ:

Лапароскопическое оборудование, инструменты для эндоскопической хирургии.
Импланты (суставы, протезы сосудов, костей, клапаны сердца)
Атроскопы, биопсийные щипцы, дерматом,
Дрель костная, присоединительные элементы для наркозно-дыхательной аппаратуры
Цистоскопы, световоды, провода, хрусталик глаза
Аппарат «сердце-лёгкие» и т.д. (И.И. Корнев, 2000)

Таким образом, для всей этой группы МИ требуется надёжная обработка, не повреждающая материалы из которых созданы термолабильные изделия.

Согласно требованию ОСТ 42-21-2-85 существует определённая последовательность обработки МИ многократного применения. Однако с принятием на территории РФ новых стандартов ИСО эта привычная схема претерпела некоторые изменения.

Таблица 1 «Сравнение технологии очистки и дезинфекции МИ согласно ОСТ 42-21-2-85 и ГОСТ Р ИСО 15883-1-2008».


	Ручной способ (ОСТ 42-21-2-85)	Механизированный способ (ГОСТ 15883-1-2008)
1.	Ополаскивание проточной водой	Ополаскивание проточной водой (3 минуты)
2.	Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия.	Основная мойка (0,5% щелочной раствор, 60-70⁰С-10 -15минут)
3.	Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона. (0,5 мин / изделие).	Нейтрализация (1-2 мл./литр) 60 ⁰С- 1 мин.
4.	Ополаскивание проточной водой.	Ополаскивание проточной водой.
5.	Ополаскивание дистиллированной водой.	Ополаскивание дистиллированной водой.
6.		Дезинфекция (90-93⁰С-5-10 мин.)
7.	Сушка горячим воздухом	Сушка горячим воздухом

Как видно из приведённой таблицы в новом документе ГОСТ Р ИСО 15883-1 очистка предшествует дезинфекции. С введением СанПиН 2.1.3.2630-10, впервые в отечественной практике в документе обязательном к применению указано на то, что дезинфекция может осуществляться в моюще-дезинфицирующих машинах (МДМ). Как правило, дезинфекция в МДМ осуществляется с применением физического фактора – горячей воды (70-93 ⁰С-100-1 мин.), однако, раз уж мы говорим о термолабильных изделиях, при невозможности термической дезинфекции необходимо выполнить дезинфекцию химическую. Для этих целей в МДМ используются специальные химические дезинфицирующие растворы на основе надуксусной кислоты, и дезинфекция также встроена в программу работы МДМ с целью повышения эффективности процесса химической дезинфекции и снижения вредного воздействия химического фактора на работающий персонал.

Основным документом, определяющим выбор метода для обработки МИ многократного применения является инструкция по эксплуатации конкретного медицинского изделия. Согласно ИСО 17664 «Информация, предоставляемая изготовителем, для проведения повторной стерилизации медицинских изделий», ответственность за выбор и валидацию определённого способа обработки для конкретного медицинского изделия несёт изготовитель. Настоящий стандарт ИСО 17664 устанавливает требования к информации, которую должен предоставить изготовитель медицинского изделия для обеспечения безопасной стерилизации.

Организация, занимающаяся обработкой, соответственно, должна руководствоваться специальными инструкциями изготовителя медицинского изделия в части выбора оборудования и/или химических реагентов.

Требования, предъявляемые к обработке МИ, охватывают полностью или частично следующие процедуры:

— подготовку на месте;

— подготовку, очистку, дезинфекцию;

— сушку;

— проверку, обследование и испытания;

— упаковывание;

— стерилизацию;

— хранение.

Как известно при обработке МИ качественная стерилизация невозможна без качественной очистки изделий. Причём согласно СанПиН 2.1.3.2630-10 предстерилизационная очистка имеет своей целью не только процесс удаления всех видов загрязнений, но и снижение микробной контаминации изделий до уровня, не превышающего уровень биоиндикатора.

Должен быть установлен валидированный метод ручной очистки. Должен быть также установлен как минимум один валидированный метод автоматической очистки с применением оборудования для очистки/дезинфекции, за исключением случая, когда медицинское изделие не выдерживает данной обработки, о чем должно быть обязательно указано в инструкции. (ИСО 17664)

Требования к дезинфекции МИ говорят о том, что должен быть установлен валидированный неавтоматизированный метод дезинфекции. Должен быть также установлен как минимум один валидированный автоматический метод с применением оборудования для очистки/дезинфекции, за исключением случая, когда медицинское изделие не выдерживает данной обработки.

Стандарт ИСО 17664 недвусмысленно указывает на то, что все процессы, связанные с обработкой изделий, должны быть валидируемы. И это неслучайно, поскольку в Европейских странах процедура валидации обязательно проводится 1 раз в год и оборудованное для очистки/дезинфекции и стерилизации в организациях, проводящих очистку, должно быть аттестовано и пройти валидацию для обеспечения необходимой степени очистки.

После проведения очистки и дезинфекции МИ, согласно требованиям СанПиН 2.1.3.2630-10 проходят контроль качества предстерилизационной очистки с применением соответствующих реактивов.

При отсутствии на обрабатываемых изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств и следов крови необходимо позаботится о сохранности стерильности изделий, для чего используются соответствующие виды стерилизационных упаковочных материалов соответствующих ГОСТ Р ИСО 11607-2003.

В отношении применения стерилизационных упаковочных материалов ИСО 17664 говорит о том, что если при стерилизации требуется специальный метод упаковывания или размещения, то это должно быть указано в инструкции, исходя из используемого метода стерилизации. При стерилизации МИ формальдегидом и окисью этилена может быть использована слоистая целлюлозная упаковка, однако для стерилизации плазмой паров пероксида водорода данная упаковка неприменима ввиду того, что целлюлоза впитывает пероксид водорода и снижает его концентрацию. В данном случае должна использоваться упаковка на основе специфических синтетических материалов, несорбирующих пероксид водорода.

Стерилизация МИ, как финальная фаза обработки изделий многократного применения, является валидируемым процессом уничтожения всех жизнеспособных форм микроорганизмов.

Должен быть установлен валидированный метод стерилизации. По возможности в инструкции, должна быть приведена следующая информация, включая место сборки и верхнее и нижнее значение критических параметров процесса, обеспечивающего необходимый уровень стерилизации медицинского изделия:

— средства проведения стерилизации медицинского изделия;

— наименование и концентрацию вещества, применяемого при стерилизации;

— идентификация максимального содержания загрязнения в конденсате пара при обработке влажным теплом, оксидом этилена и/или паром или формальдегидом;

— необходимая степень влажности;

— минимальное время проведения или выдержки в веществе, применяемом при стерилизации;

— описания процедуры/технологии после стерилизации;

— давление при стерилизации;

— описание порядка применения; — необходимая температура вещества, применяемого при стерилизации.

Примечание – Преимущество отдается стерилизации влажным теплом.

Как видно из требований ИСО 17664 метод стерилизации низкотемпературных методов определяется производителем изделия. Если этих методов много то все они должны быть описаны в инструкции.

Существует ряд технологий, позволяющих проводить низкотемпературную стерилизацию, однако все эти технологии имеют как свои плюсы, так и свои минусы.

Таблица 2 Достижения и недостатки используемых стерилизационных технологий. (W. Rutala, D. Weber., 2008)

Метод стерилизации

Достижения

Недостатки

Пар

Нетоксичен для пациентов, персонала, окружающей среды

Цикл легко контролировать

Быстрое уничтожение микроорганизмов

Проникает в упаковочные материалы, каналы изделий

Быстрый цикл стерилизации

Губителен для термочувствительных инструментов

Со временем повреждаются микрохирургические инструменты

Может оставлять инструменты влажными и быть причиной коррозии

Плазма паров пероксида водорода

Безопасно для окружающей среды

Нетоксичные продукты

Цикл занимает от 28 до 75 минут (зависит от типа модели), не требует аэрации

Используется для влаго и термочувствительных изделий с температурой менее 50 ⁰С

Прост для монтажа, использования и контроля, требует только электрического подключения

Совместим с многими медицинскими изделиями

Целлюлозная бумага, бельё, жидкости не могут быть простерилизованы

Размер стерилизационной камеры от 60 до 300 литров в зависимости от модели

Некоторые эндоскопы и медицинские изделия с длинными тонкими каналами не могут быть простерилизованы (см. рекомендации производителя)

Требуется синтетическая упаковка на основе полипропилена или полиолефина или специальные контейнеры

Пероксид водорода может быть токсичным при уровне более 1ppmTWA

100% Окись этилена

Проникает в упаковочные материалы, каналы изделий

Картридж одноразовый и отрицательное давление в камере минимизируют потенциальную утечку газа и воздействие окиси этилена

Прост для использования и контроля.

Совместим с многими медицинскими изделиями

Требуется аэрация для удаления остатков окиси этилена

Стерилизационная камера от 126 до 263 литров в зависимости от модели

Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема

Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредствам катализа на 99,9% с образованием СО₂ и Н₂О

Картриджи с окисью этилена следует хранить в местах защищённых от возгорания

Смесь газов окиси этилена

Проникает в упаковочные материалы и пластик

Совместим с многими медицинскими изделиями

Прост для использования и контроля

Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредствам катализа на 90-99,9% с образованием СО₂ и Н₂О

Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема

Потенциально опасна для персонала и пациентов

Длинный цикл /время аэрации

Надуксусная кислота

Быстрое время цикла (30-45 мин.)

Низкая температура (50-55 ⁰С, стерилизация погружением в жидкость)

Безопасные для окружающей среды конечные продукты

Стерилянт проходит через эндоскоп с удалением солей, белка и микроорганизмов

Стерилизация без упаковки

Невозможно проконтролировать биологическими индикаторами

Используется только для погружаемых инструментов

Несовместима с некоторыми материалами (анодированный алюминий тускнеет)

В одном цикле можно обработать малое количество инструментов

Потенциально опасно для глаз и кожи при контакте с концентрированными растворами)

Также нельзя не отметить тот факт, что надуксусная кислота не зарегистрирована в РФ как стерилянт.

Специалистами США также отмечено, что стерилизация погружением в жидкость трудноприменима ввиду того, что необходима отмывка стерильной водой и доставка к месту использования в асептических условиях. Обычно химические стерилянты не могут быть проконтролированы с использованием биологических индикаторов для подтверждения стерильности (W. Rutala, D. Weber., 2008).

Окись этилена (EO)

Окись этилена была открыта в 1859 году Ш. Вюрцем. С 20 годов ХХ века применялась как инсектицид ввиду сильных проникающих свойств. С 50 годов ХХ века используется в качестве стерилянта в виде 100% или в смеси газов для стерилизации термо и влагочувствительных изделий. В качестве сырья окись этилена также используется в парфюмерии при изготовлении искусственного розового масла.

Сильные алкилирующие свойства (замена атома водорода в алкильной группе) делают этиленоксид универсальным ядом для протоплазмы: вещество вызывает свёртывание белка, дезактивацию ферментов и других биологически важных компонентов живого микроорганизма. (S. Conviser, 2000). Контроль эффективности стерилизации осуществляется химическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2009) и биологическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11138-2-2000). Необходимо проведение валидации процесса этиленоксидной стерилизации (ГОСТ Р ИСО 11135-2000).

Формальдегид (LTSF)

Впервые антимикробные свойства формальдегида описаны Lowe D., в 1886 году.

Формалин — водный 35—40%-ный раствор формальдегида, или муравьиного альдегида СН₂0-обладает своеобразным раздражающим запахом. Содержит примеси муравьиной кислоты и метилового спирта, добавляемого для стабилизации раствора (предохранение от полимеризации формальдегида). Взаимодействуя с белком протоплазмы клеток, формальдегид вызывает его свертывание, и гибель клеток этим объясняют его противомикробное и местно-раздражающее действие на ткани организма, формалин, действует как на вегетативные формы бактерий, так и на их споры и применяется главным образом для внешней дезинфекции (обеззараживание помещений, одежды, посуды и т. д.). (Большая советская энциклопедия)

В качестве стерилянта применяются 40% растворы формальдегида. Несомненным преимуществом формальдегидной стерилизации является то, что она возможна в комбинированных стерилизаторах работающих как на паровых циклах, так и на формальдегидных циклах. Время цикла формальдегидной стерилизации значительно быстрее, чем при стерилизации окисью этилена и стоимость цикла ниже. (W. Rutala, D. Weber., 2008). Стерилизация формальдегидом происходит при температуре 60-80 ⁰С и влажности 75-100%. Весь цикл формальдегидной стерилизации происходит при отрицательном давлении, что снижает риск воздействия формальдегида на персонал, однако при недостаточно эффективной работе систем приточно-вытяжной вентиляции возможен запах формальдегида на этапе сброса формальдегида из камеры.

Контроль эффективности стерилизации осуществляется химическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2009) и биологическими индикаторами (EN ИСО 11138-5 и ГОСТ Р ИСО 18472-2009). Необходимо проведение валидации процесса пароформальдегидной стерилизации согласно (ГОСТ Р ИСО 14180-2008).

Плазма паров перекиси водорода (Gas Plasma)

Впервые исследования по спороцидной активности плазмы паров пероксида водорода были проведены в США в 1986 году (Lin). Плазма генерируется в стерилизационной камере для чего в камере создаётся глубокий вакуум с использованием высокочастотной или микроволновой энергии и газообразным пероксидом водорода с образованием большого количества свободных радикалов с незавершёнными электронными орбиталями. Свободные радикалы контактируют с клеточными компонентами (ферментами и нуклеиновыми кислотами) микроорганизмов окисляя их и прерывают метаболизм микроорганизмов (W. Rutala, D. Weber., 2008).

Проникновение в длинные и тонкие каналы у плазмы паров пероксида водорода посредством диффузии недостаточно и для этих целей в технологии используется диффузный усилитель (бустер) представляющий собой небольшую раздавливаемую стеклянную ампулу, содержащую 50% пероксида водорода, разрушаемую перед стерилизацией. Но даже с бустером существуют ограничения по длине и диаметру обрабатываемых каналов. В 2009 году немецкими исследователями проведено исследование новой технологии Sterrad NX и было отмечено то, что увеличение процентного содержания молекул пероксида в стерилизационной камере с 60 до 85%-95% за счёт удаления излишков воды обеспечивает лучшее проникновение стерилянта в канальные изделия диаметром 0,7 мм. и длиной 500 мм. без бустера. (Marianne Borneff-Lipp, Matthias Dürr, 2009)

Однако с другой стороны увеличение содержания оксидативного стерилянта может негативным способом сказаться на различных склонных к окислению материалах.

Цикл стерилизации в стерилизаторе плазмой паров пероксида водорода может составлять от 28 до 75 минут в зависимости от типа модели при этом аэрации не требуется, что, в свою очередь, обеспечивает быстрый оборот стерилизуемого инструмента.

Так как же тогда выбрать наиболее эффективный и безопасный метод стерилизации для лечебно-профилактического учреждения? На наш взгляд в первую очередь необходимо проанализировать те методы, которые рекомендует производитель МИ применяемых в конкретном лечебном учреждении. Для этого составляется сводная таблица (см. таблицу 3). В эту таблицу заносятся все существующие в ЛПУ МИ и имеющиеся на рынке стерилизационные тезнологии.

Таблица 3 «Выбор метода низкотемпературной стерилизации (пример)».

	ЭО 37⁰С	ЭО 55⁰С	Формальдегид 60⁰С	Формальдегид 80⁰С	Плазма паров пероксида водорода
1. Лапароскоп	+	+	+	—	+
2. Иск. сустав	+	+	+	—	+
3. Электрокардиостимулятор	+	—	—	—	+
4.Гибкий эндоскоп	+	+	+	—	+/-
5. Дрель костная	+	+	+	—	+

После заполнения таблицы появится информация, что большее количество изделий можно простерилизовать безопасно и надёжно с применением одной или двух из существующих технологий. Конечно возможно использовать все существующие технологии, однако это достаточно накладно при закупке и эксплуатации виде затрат на техническое обслуживание, детали, расходные материалы и др. К примеру ведущие специалисты нашей страны рекомендуют в качестве основного метода низкотемпературной стерилизации использовать газовый метод с использованием окиси этилена, показавший свою эффективность в течение 35-летнего практического применения в ЛПУ, вспомогательным – плазменный метод (И.И. Корнев, С.М. Савенко, 2011).

Порою при выборе метода низкотемпературной стерилизации мы сталкиваемся с изделиями многократного применения, закупленными достаточно давно, у которых в силу ряда причин, утеряны паспорта. В этом случае возникает вопрос: Как стерилизовать эти изделия? В нашем случае мы вступили в переписку с производителем изделия, которому отправили письмо следующего содержания:

Администрация Городской клинической больницы № N ДЗ города Москвы просит Вас определить возможность стерилизации изделия вашего производства (Дрель, зажим и др.) в среде газа окиси этилена (формальдегида, плазмы пероксида водорода) при температуре ХХ ⁰С — Х час, а также определить время аэрации в аэраторе при температуре ХХ ⁰С.

После получения ответа от организации-производителя вопросы по стерилизации этих медицинских изделий были сняты.

Нельзя не отметить также тот факт, что СанПиН 2.1.3.2630-10
однозначно запрещает перестерилизовывать использованные МИ однократного применения. Этот процесс невозможен также ввиду того, что производитель МИ при разработке изделия не закладывал в изделие возможность перестерилизации и в этом случае юридическая ответственность за перестерилизацию МИ однократного применения ложится на тех сотрудников ЛПУ, которые санкционировали подобное действие.

Заключение:

Выбор метода низкотемпературной стерилизации неразрывно связан с требованием производителей МИ многократного применения и зависит от физико-химических свойств стерилизуемых материалов.
Все, существующие на данный исторический момент низкотемпературные стерилянты в той или иной степени опасны для человека. Необходимо весьма внимательно относится к организации работ по низкотемпературной стерилизации с составлением соответствующих инструкций по безопасной эксплуатации технологического оборудования и обучением лиц, занятых на работах по низкотемпературной стерилизации.
Для осуществления предстерилизационной очистки, дезинфекции и низкотемпературной стерилизации термолабильных МИ в ЛПУ необходимо использовать валидируемые методы, разрешённые производителем стерилизуемых материалов и утверждённые на территории РФ.

Литература

СП 3.1.1275-03 Профилактика инфекционных заболеваний при эндоскопических манипуляциях.
МУ 3.5.1937-04 «Очистка, дезинфекция и стерилизация эндоскопов и инструментов к ним»
ИСО 17664» «Информация, предоставляемая изготовителем, для проведения повторной стерилизации медицинских изделий»
И.И. Корнев «Стерилизация изделий медицинского назначения в лечебно-профилактических учреждениях» АНМИ 2000г.
Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities, William A. Rutala, Ph.D., M.P.H., David J. Weber, M.D., M.P.H., and the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee, CDC, 2008
ГОСТ Р ИСО 11607-2003 «Упаковка для изделий, подлежащих финишной стерилизации»
И.И. Корнев, С.М. Савенко» Современные методы предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения» ООО Миле СНГ, 2011.
What’s new in h3O2 Gas Plasma Sterilization? Results of microbiological efficacy testing with the NX technology Marianne Borneff-Lipp, Matthias Dürr ASP Satellite Symposium, WFHSS Conference October 8th 2009, Crete, Greece

Журнал Главная медицинская сестра №11 за 2011 год

специалист по дезинфекции — о радиационной обработке медицинских изделий — РТ на русском

Дезинфекция медицинского оборудования и экипировки на ускорителе электронов позволяет сделать эти изделия «абсолютно стерильными» и безопасными для человека. Об этом в эксклюзивном интервью RT рассказал Дмитрий Шерстень, генеральный директор сети центров промышленной радиационной обработки «Стерион», дочернего предприятия госкорпорации «Росатом». По его словам, из-за пандемии коронавируса предприятие перешло на круглосуточный режим работы. Специалист также отметил, что уже к маю центр сможет ежемесячно стерилизовать до 300 тыс. специальных пробирок — систем для транспортировки вирусов и до 10 млн масок в неделю.

— Пандемия коронавируса затронула буквально все сферы жизни. Как она отразилась на вашей работе? Какие задачи стоят сейчас перед вашим предприятием?

— Перед нами сейчас стоит важная задача по стерилизации медицинских масок и систем для транспортировки вирусов, в том числе для SARS-CoV-2. Предприятие теперь функционирует круглосуточно, организован трёхсменный режим, хотя раньше мы работали в две смены.

Транспортные системы и маски приезжают небольшими партиями, но часто, в любое время дня и ночи, и это потребовало перенастройки некоторых процессов.

— Стерилизация ионизирующим излучением на вашем оборудовании доступна только для заказчиков из России, или вы работаете и на экспорт?

— У нас есть несколько заказчиков из Белоруссии, и сейчас мы обсуждаем контракт с Арменией. Всё это частные компании, которые занимаются производством медицинских изделий. Однако они реализуют свою продукцию в России, поэтому им нужно проводить стерилизацию изделий на территории РФ.

— Есть ли разница между стерилизацией медицинских масок и транспортных систем?

— Процесс стерилизации единый, есть лишь некоторая разница в технологических приёмах. Основная действующая единица установки — линейный ускоритель электронов, который произведён на одном из предприятий госкорпорации «Росатом». Этот аппарат генерирует мощный поток электронов с высокой энергией, который проходит сквозь коробку и уничтожает ДНК абсолютно всех микроорганизмов — как патогенных, так и непатогенных. Обработанные таким образом продукты становятся абсолютно стерильными.

Как в России проходит производство клапанов для ИВЛ и стерилизация медицинского оборудования

Если говорить языком цифр, то наш метод обеспечивает микробиальную чистоту 10 в минус шестой степени. Это означает, что на миллион обработанных единиц может выжить всего одна колония микроорганизмов. То есть изделие становится безопасным для человека.

— А как быть с транспортными системами? Там ведь должна быть живая среда для вируса?

— Среда нужна, чтобы обеспечивать минимальную жизнедеятельность вируса — он не должен погибнуть за время транспортировки до лаборатории. А сама по себе транспортная система должна быть стерильной.

Также по теме

«Сохраняется медленный темп прироста»: главный санитарный врач РФ — о ситуации с распространением COVID-19 в России

В России сохраняются очень плавные темпы прироста заболевания коронавирусной инфекцией нового типа — показатели не выходят за уровень…

— Сколько таких транспортных систем ежедневно проходит стерилизацию на вашем предприятии?

— Сейчас мы наращиваем обороты. В апреле наша цель — провести стерилизацию 150 тыс. транспортных систем, в мае — 300 тыс. Начиная с июня — 550 тыс. ежемесячно.

— А по маскам какие цифры?

— Можем стерилизовать до 10 млн штук в неделю. Общий объём госконтракта по маскам — 60 млн единиц.

— Это общий объём по всем площадкам или только по вашему предприятию?

— Это заказ, который мы можем делать у себя на предприятии, а также с привлечением сторонних компаний, которые тоже проводят стерилизацию и входят в периметр госкорпорации «Росатом». Этим занимаются несколько производственных площадок, и сейчас все они выходят на максимальную производительность.

Нужно ли стерилизовать мед [или можно ли его есть в сыром виде?] — Grampa’s Honey

Вы собрали свой мед и теперь задаетесь вопросом, можете ли вы использовать его. Мед — это волшебная пища, у которой множество применений. В большинстве случаев люди используют его для заправки маринадов, салатов и других блюд. Другие используют его вместо столового сахара как более полезного для здоровья варианта. Мед в сыром виде может содержать воск, дрожжи и пыльцу. Хотя мед обладает противомикробными и антисептическими свойствами, он может причинить минимальный вред младенцам и людям с ослабленным иммунитетом из-за наличия некоторых примесей.Однако не волнуйтесь, вы можете выбрать пастеризованный или сырой мед в зависимости от ваших потребностей. Если вы только что собрали мед или купили банку сырого меда и хотите продезинфицировать ее, вот все, что вам следует знать.

Мед обладает антимикробными и антисептическими свойствами, что делает его пригодным для любых микроорганизмов. Следовательно, вам не обязательно стерилизовать его, так как это может поставить под угрозу такие качества, как натуральный аромат и другие преимущества для здоровья сырого меда. Однако, если вы беспокоитесь о проглатывании небольшого количества дрожжей, плесени, грибков и бактерий (особенно если у вас есть ребенок в возрасте до 1 года), есть простой способ дезинфицировать его, чтобы избавиться от любых вредных микроорганизмов. настоящее время.

Если вы пчеловод, пивовар или любитель меда, вы хотите быть уверены, что используемый вами продукт безопасен. Мед естественно безопасен, особенно когда его собирают и собирают в чистой среде. Сырой мед не причинит вам вреда, но если вам нужно его пастеризовать, нужно делать это правильно, иначе от него не будет никакой пользы. Из этой статьи вы узнаете, как сохранить свой мед чистым и безопасным для использования. Научитесь делать это правильно.

Нужно ли стерилизовать мед?

Мне нравится мой сырой мед со всеми его натуральными качествами, ароматом и антимикробными свойствами.Как вы, вероятно, уже знаете, у меда бесконечный срок хранения из-за его способности убивать любые живые организмы, которые могут поставить под угрозу его качество, вызывая его порчу. Таким образом, мед должен быть безопасным для большинства людей, но в некоторых ситуациях его можно стерилизовать.

Во-первых, вы можете стерилизовать, чтобы избавиться от любых примесей, таких как воск и пыльца. Хотя они обычно безвредны, если у вас нет особой аллергии.

Мед может содержать некоторые бактерии, такие как Clostridium botulinum, которая, как известно, вызывает детский ботулизм.Обычно в меду в неактивном состоянии могут выжить только споры. По этой причине младенцам младше одного года не следует употреблять мед, поскольку споры могут размножаться в их кишечнике. Если вы опасаетесь проглатывания небольшого количества дрожжей, плесени, грибков и бактерий, стерилизация должна помочь избавиться от них и дать вам душевное спокойствие.

При употреблении сырого меда очень помогает, если вы знаете, что едите качественный урожай. Поэтому рекомендуется покупать медовые продукты у местного пчеловода, который занимается экологически рациональным и безопасным пчеловодством.Таким образом, вы можете быть уверены, что получите чистый и полезный мед, который можно употреблять в сыром виде.

Как стерилизовать мед дома

Собирали ли вы мед или купили банку сырого меда, вы все равно можете стерилизовать его дома. Для этого не нужна подготовка. Это простой распорядок, как приготовление любой еды. Вот как это сделать.

Добавьте воды в кастрюлю или кастрюлю и доведите ее до кипения.

2. Поместите банку сырого меда в кипящую воду.

3.Поместите термометр для конфет в мед и нагрейте мед до 63–65,3 °.

4. Отрегулируйте плиту, чтобы поддерживать эту температуру, и дайте меду стерилизоваться не менее 22 минут.

5. Перелейте чистый мед в уже стерилизованные и сухие банки для хранения.

Какая температура убивает бактерии в меде?

Нагревание выше 45 ° убивает любые бактерии в меде. Стоит отметить, что нагрев не является избирательным и устраняет как вредные микроорганизмы, так и антиоксиданты, бактерии и ферменты, которые придают сырому меду магию.Некоторые люди считают, что нагревание меда испортит его естественный вкус и лечебные свойства, сделав его просто подсластителем.

Во время всех этих разговоров о стерилизации вам придется много разливать и переносить мед. При обращении с медом всегда есть шанс пролить немного меда! И поверьте мне, убирать этот липкий беспорядок может быть болью! Поэтому мы подумали, что дадим вам быструю очистку от меда. 101 🙂

Как удалить затвердевший мед?

Чистый мед без фальсификации затвердевает в процессе, называемом кристаллизацией.Вы должны стараться не беспокоиться о кристаллизации вашего меда, а радоваться его затвердеванию, что является доказательством того, что ваш мед натуральный, а не бутылка фруктозы с медовым вкусом.

Мед сладкий, волшебный и полезный, но из него можно пролить самые стойкие утечки. Чтобы избежать проблем с удалением разливов меда, их следует удалять немедленно. Если оставить пролив на некоторое время, мед затвердеет, что затрудняет его очистку.

Чтобы удалить остатки затвердевшего меда, вам понадобится кипяченая / горячая вода, пара чистящих перчаток и губка.Начните с того, что полейте пластырь горячей водой, накройте его бумажными полотенцами или губкой и оставьте на некоторое время. Губка или бумажные полотенца должны впитать мед, который, в свою очередь, станет жидким под воздействием горячей воды. Удалите губку и очистите их. Если на салфетке больше меда, нужно повторить процесс пару раз.

Обязательно используйте горячую, а не теплую воду. Кроме того, вам потребуется достаточно терпения, чтобы не допустить еще более значительного разлива. Если пролив меда густой и твердый, вы можете использовать нож, чтобы отрезать часть меда, чтобы вам было легче избавиться от него.

Если ваша ткань или поверхность обесцвечиваются, вы можете очистить их с помощью пятновыводителей и моющих средств, чтобы сохранить первоначальный цвет.

Как очистить банку с медом?

Рекомендуемые банки для меда изготовлены из стекла или пластика, безопасного для хранения продуктов. Настоящий / чистый мед липкий и со временем кристаллизуется, что затрудняет очистку банок с медом. Так же, как и при удалении пролитого меда, вам нужно будет промыть банку горячей водой.

Прокипятите воду и налейте ее в банку с медом, пока она еще горячая.Вы можете использовать чистящие перчатки, чтобы не обжечься горячей водой. Покрутите банку, чтобы мед стал мягче. Повторите процесс несколько раз с горячей водой, чтобы получить чистую банку.

Если вам нужна банка для хранения меда, вы можете купить предварительно стерилизованные. Мед обладает противомикробным действием, поэтому не обязательно стерилизовать бутылку перед переливом меда. Но лучше перестраховаться, не так ли! Чтобы очистить банки, вы можете поместить их в посудомоечную машину вверх дном и дать им пройти полный цикл.Затем вы можете поместить их в предварительно нагретую до 140 ° духовку, чтобы стерилизовать. Вымойте крышки в горячей воде с мылом и дайте им высохнуть.

Как удалить мед с пластика?

Лучше всего удалить мед из пластиковой банки с помощью горячей водяной бани. Обычно достаточно горячей водяной бани в кастрюле, но вы рискуете расплавить пластиковую банку и испортить мед, когда температура воды достигнет 140 °. По этой причине вы можете использовать горячую воду и оставить кристаллизованный мед внутри бутылки, чтобы он растаял.Вы можете повторять процесс, пока пластиковая банка не станет чистой. Продолжайте помешивать воду или вращать бутылку, пока весь мед не растворится в воде, и ваша банка останется чистой.

Что растворяет мед?

Чистый мед не растворяется в воде, если вы не добавите теплую воду и не продолжите помешивать некоторое время. С другой стороны, некачественный мед сразу растворяется в воде. Мед также нерастворим в спирте, если его предварительно не смешать с небольшим количеством воды. Высокая нерастворимость меда во многих растворителях используется в качестве теста качества для проверки на фальсификацию и высокое содержание влаги.

Источники

https://diethive.com/decrystallize-honey-bottle/#:~:text=A%20Different%20Type%20of%20Hot%20Water%20Bath&text=Simply%20fill%20a%20bowl%20with,it % 20получит трюк.

https://www.northumbrianbees.co.uk/simple-hygienic-small-scale-honey-processing-jarring-honey/#:~:text=The%20jars%20are%20cleaned%20by,down%20to% 20a% 20% 20температура.

Why Has My Honey Turned Solid? Because It’s Real!

https: // expandusceramics.com / qa / quick-answer-how-do-you-remove-hardened-honey.html

How to Conquer Sticky Honey Spills with Patience

https://www.ecrotek.co.nz/learn/articles/detail/dont-overheat-your-honey#:~:text=Heating%20honey%20to%20high%20temperas,that%20make%20honey%20so% 20мощный.

https://www.ehow.co.uk/how_8722820_sterilize-honey-home.html

https://medium.com/four-pursuits-ventures/honey-adulteration-and-impurities-fdea9144dd5d

Стерилизация улей материал с двойной индуктивно связанной плазмой низкого давления

Американский гнилец — тяжелое заболевание медоносных пчел, подлежащее уведомлению.Это вызвано заражением личинок пчел спорами грамположительной бактерии Paenibacillus larvae . Споры этого организма в большом количестве обнаруживаются в инфицированном улье и обладают высокой устойчивостью к физическим и химическим методам инактивации. Процедуры восстановления пораженных пасек часто приводят к уничтожению ульевого материала. В этом исследовании мы оцениваем пригодность двойной индуктивно связанной плазмы низкого давления в качестве неразрушающего, но эффективного альтернативного метода инактивации бактериальных спор модельного организма Bacillus subtilis на материале улья.Плазменная обработка позволила эффективно удалить споры из воска, который в соответствии с протоколами, установленными в настоящее время в ветеринарной практике, обычно уничтожается зажиганием или автоклавируется для стерилизации. Споры удалялись с деревянных поверхностей со значительно большей эффективностью, чем методы, используемые в настоящее время в ветеринарной практике, такие как обработка пламенем. Кроме того, мы смогли неразрушающим способом удалить споры из очень хрупких восковых структур сот, что потенциально сделало обработку ульевого материала двойной индуктивно связанной плазмой низкого давления частью быстрого и надежного метода реабилитации инфицированных пчелиных семей с потенциалом восстановления. -использовать соты.

Медоносная пчела играет важную роль в опылении многих сельскохозяйственных культур. В 2005 году мировая экономическая стоимость опыления насекомыми оценивалась в 105 миллиардов фунтов стерлингов (153 миллиарда евро) [1]. Снижение активности опыления медоносными пчелами имело бы пагубные экономические последствия и снизило бы урожайность. Кроме того, важным финансовым фактором является прямая продажа продуктов пчеловодства. По данным Продовольственной и сельскохозяйственной организации Объединенных Наций (ФАО), глобальная валовая стоимость производства меда в 2012 году составила 4 фунта стерлингов.2 миллиарда (6,6 миллиарда долларов).

Медоносным пчелам угрожают различные факторы, такие как болезни, паразиты, пестициды, экологические и социально-экономические факторы [2]. Одним из наиболее серьезных заболеваний пчел является американский гнилец (AFB) [3], единственное заболевание пчел, подлежащее регистрации во многих странах. Возбудителем этого разрушительного заболевания является грамположительная факультативная анаэробная бактерия Paenibacillus larvae (ранее Bacillus larvae ). P. larvae может образовывать споры, которые обладают высокой устойчивостью к неблагоприятным условиям, таким как среда с низким содержанием питательных веществ, засушливость, радиация, кислотность и т. Д.

Менее 10 из этих спор достаточно для успешного заражения личинок пчел в течение первых 24–36 часов их жизни [4, 5]. Для заражения личинок в возрасте 48 ч нужны уже миллионы спор, а взрослые пчелы личинки P. совершенно не поражаются [6]. Споры обычно скармливаются молодой личинке с маточным молочком, пыльцой и медом, которые рабочие пчелы доставляют в пищу расплоду [7]. Затем споры прорастают, и вегетативные бактерии колонизируют среднюю кишку личинки.Вегетативные бактерии в конечном итоге разрушают эпителиальный барьер кишечника и переваривают личинку изнутри. Большинство личинок полностью разлагаются, даже не достигнув стадии куколки. Наконец, вегетативные бактерии снова образуют споры [3].

Эти споры затем образуют в смеси с остатками личинки так называемые чешуйки на дне клетки. Затем рабочие пчелы пытаются удалить чешуйки, часто безуспешно [8, 9]. Считается, что такое очищающее поведение рабочих пчел играет важную роль в распространении болезни по улью [7, 9].Чешуя вместе с разложившимися телами личинок и впавшими или перфорированными крышками клеток являются клиническими признаками заражения улья КУБ [10]. Если не лечить, зараженный улей обычно разрушается.

КУБ является заболеванием, подлежащим регистрации во многих странах [2]. Как только пчеловод обнаруживает заражение улья AFB в этих странах, должен быть проинформирован официальный ветеринарный врач. Затем ветеринар примет меры, чтобы предотвратить распространение болезни. Антибиотики, такие как окситетрациклин, оказались неэффективными из-за появления устойчивых штаммов AFB [11–13], а их использование в пчеловодстве строго регулируется во многих странах, например, в Европейском союзе [14].Контроль AFB путем физической или химической инактивации затруднен из-за резистентной природы возбудителя. Известно, что споры трудно дезактивировать [15], особенно в условиях, когда они встречаются в полевых условиях. Поэтому некоторые страны разработали радикальные методы борьбы с болезнью. В Новой Зеландии зараженная пчелиная семья, включая всех взрослых пчел, расплода и материал улья, обычно уничтожается путем возгорания в соответствии со Стратегией борьбы с американскими гнильцами Новой Зеландии (AFB NPMS) / Законом о биобезопасности (приложение 1).В Германии обычно применяется процедура искусственного роения, при которой взрослые пчелы удаляются из зараженного расплода и таким образом обеспечивается выживание взрослых пчел [16]. Инфекционный ульевой материал и расплода затем инактивируются химически путем кипячения в 3% -ном гидроксиде натрия (щелочи), физически путем обжига путем обработки пламенем или путем воспламенения. Убивающая эффективность методов химической инактивации, как правило, низкая, и даже обжигание древесины пламенем не способно надежно удалить споры и предотвратить повторное заражение [17, 18].Кроме того, результат применения этих методов часто трудно контролировать из-за условий работы, обычно встречающихся в полевых условиях. Альтернативные методы, такие как гамма-облучение для стерилизации, были разработаны и коммерчески доступны в некоторых странах [19–21], но, насколько нам известно, обычно не используются в процедурах, предписываемых официальными ветеринарами.

Описанные выше методы неизбежно приводят к потере хрупкой сотовой структуры воска и часто вызывают разрушение или структурное ослабление деревянных или пластмассовых частей материала улья.Хотя мед можно извлечь из зараженных ульев и продать, а пчелиный воск можно расплавить, а затем автоклавировать для эффективной стерилизации, пчеловод, пострадавший от AFB, часто сталкивается с большими экономическими потерями. Эти потери могут быть вызваны полной потерей пчелиных семей или значительными потерями продуктивности семьи, когда она восстанавливается путем искусственного роения, потерей ульевого материала и значительным объемом работы, затрачиваемой на восстановление поврежденных ульев.

Таким образом, было бы желательно расширить существующие реабилитационные процедуры неразрушающим, быстрым и эффективным методом инактивации, который можно было бы использовать в полевых условиях для стерилизации пораженного ульевого материала.

Недавно мы использовали реактор с двойной индуктивно связанной плазмой (DICP) для стерилизации нескольких термочувствительных поверхностей. DICP представляет собой реактор низкого давления, и условия плазменной обработки можно регулировать таким образом, чтобы температура чувствительных поверхностей оставалась ниже температур повреждения материала во время обработки [22]. Мы уже могли показать, что 10 ⁶ КОЕ спор Bacillus atrophaeus , распыленных на предметные стекла, могут быть эффективно уничтожены в этом реакторе за 40 секунд обработки в аргон / водородной плазме [23].Поэтому мы предположили, что этот плазменный реактор потенциально может быть использован для неразрушающей стерилизации материала ульев.

В этом исследовании мы используем реактор DICP для эффективного удаления спор из материала улья. В нашем исследовании мы используем споры модельного организма Bacillus subtilis . B. subtilis является близким родственником P. larvae , и продукты, полученные из него, имеют статус GRAS (обычно считается безопасным). В отличие от высокоинфекционного P.larvae, B. subtilis , поэтому можно использовать в полевых исследованиях. Наши данные демонстрируют, что реактор DICP может работать при температурах, которые не влияют на структуру пчелиного воска в сотах, и в то же время эффективно снижают количество спор в воске, обработанном спорами, и на деревянных поверхностях. Мы пришли к выводу, что плазменная обработка может стать жизнеспособной альтернативой или расширением схем стерилизации, используемых в настоящее время в ветеринарной практике для материалов для ульев во время вспышек КУБ.

2.1. Пробоподготовка

2.1.1. Образцы пчелиного воска

Пчелиный воск автоклавировали и затем сушили в течение 5 дней при 80 ° C для удаления остаточной воды из процесса автоклавирования. Затем примерно 6 мл воска в стерильных условиях выливали в чашки Петри диаметром 60 мм и давали остыть. Затем восковые пластины разрезали пополам, и половинки помечали как совпадающие пары.

2.1.2. Образцы древесины.

15 × Деревянные прижимы для языка 2 см (VWR, Дармштадт, Германия) разрезали на части 4 см.Круглые концевые детали отбраковывались, полностью прямоугольные детали помечались как совпадающие пары, автоклавировались и сушились в течение ночи при 60 ° C.

2.1.3. Стеклянные горки.

Стандартные предметные стекла микроскопа очищали салфетками от пыли и 100% этанолом. Они были помечены водонепроницаемым маркером как совпадающие пары, автоклавированы и высушены в течение ночи при 60 ° C.

2.1.4. Образцы сот.

Рамы из 1 × брусков из фрезерованной сосны 2 см и размером 9,5 × 9.8 см были построены путем прибивания концевых стержней 9,5 см к верхним и нижним стержням 7,8 см. Клей Ponal PUR (Henkel AG & Co. KGaA, Дюссельдорф, Германия) использовался для герметизации и стабилизации контактной поверхности стыков. Затем этот деревянный каркас был натянут обжимной проволокой из нержавеющей стали через две латунные проушины, усиленные отверстиями в каждой боковой планке. Фундамент из пчелиного воска (размер ячейки 5,4 мм) был заделан в рамы с помощью электрического закладного устройства (рисунки 1 (а) и (б)). Затем восемь из этих миниатюрных рамок были прикреплены деревянными клиньями к рамкам стандартного размера «судак» (рис. 1 (c)) и помещены в верхнюю часть улья во время медового потока.

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рисунок 1. Конструкция каркасов для сот. (а) Рамы 9,5 × 9,8 см были изготовлены из 1 фрезерованных брусков сосновой древесины размером 2 см × . Стальная проволока для стабилизации сотового фундамента была натянута на раму. (б) Основа из пчелиного воска была заделана с помощью электрического закладного устройства. (c) Эти миниатюрные рамки были затем вставлены в стандартные рамки улья.

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

Супер была отделена от гнездового гнезда маточником. Во время медового потока пчелы соорудили нарисованные соты, наполненные медом, на основе пчелиного воска в раме. Мед был удален с помощью экстрактора, а затем пустые соты помещены в супероборудование еще на 2 дня, в течение которых остатки меда были удалены из рамок и стенок ячеек, поврежденных пчелами в процессе экстракции меда (рис. 2).

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рисунок 2. Миниатюрные соты. (а) Рамки стандартного размера с восемью вставленными миниатюрными рамками были помещены в верхнюю часть улья во время медового потока. Затем был извлечен мед, поврежденные клетки восстановлены, а остатки меда удалены пчелами из улья в течение 2 дней. (б) Миниатюрные соты после ремонта и извлечения меда.

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

2.2. Подготовка и поддержание эндоспор

B. subtilis

. Суспензию спор B. subtilis 168 готовили с использованием модификации среды для споруляции Schaeffers по протоколу Харвуда и Каттинга [24]. Один литр этой среды 2 × SG содержит 16,0 г питательного бульона Difco, 2,0 г KCl и 0,5 г MgSO ₄ · 7 H ₂ O. pH доводили до 7,0. После процесса автоклавирования стерильные растворы добавляли к охлаждаемой среде при 55 ° C до конечной концентрации 1 мМ Ca (NO ₃) ₂,0.1 мМ MnCl ₂, 1 µ M FeSO ₄ и 0,1% (мас. / Об.) Глюкозы. 5 мл этой среды инокулировали единственной колонией B. subtilis 168 из чашки с агаром LB (10 мкл ⁻¹ триптона, 5 мкл ⁻¹ дрожжевого экстракта, 10 мкл ⁻¹ NaCl, 1,5 % агара). Эту культуру выращивали в течение ночи в роликовом барабане при 37 ° C, и на следующий день использовали 400 мкл мкл для инокуляции 400 мл среды 2 × SG, которую инкубировали в аэробных условиях при 37 ° C.Через 48 ч смесь вегетативных клеток и спор собирали центрифугированием. Полученный осадок трижды промывали холодной стерильной водой. Затем осадок ресуспендировали в 20 мл холодного стерильного Aqua destillata ( A. dest .) И хранили при вращении при 4 ° C. Воду обновляли каждый рабочий день в течение трех недель. Содержание эндоспор в этом растворе определяли путем инкубации в течение 1 ч в 50% этаноле (об. / Об.) При комнатной температуре [25]. Параллельно с этим контрольный образец инкубировали в стерильном A.dest . Оба образца спор (50% этанол и вода) затем последовательно разбавляли 1: 10 в стерильном A. dest . 10 мкл мкл из 10 разведений ^-1-10 ^-6 пипеткой наносили на чашку с агаром LB. После сушки планшеты инкубировали в течение ночи при 37 ° C и подсчитывали количество колоний. Количество толерантных к этанолу КОЕ (= споры) и общее количество КОЕ (= вегетативные клетки + споры) сравнивали для расчета содержания спор. Через три недели суспензия была свободна от вегетативных клеток.

2.3. Нанесение суспензии спор на поверхности

Калиброванное распылительное сопло с приводом от аргона (Schlick, Кобург, Германия), установленное на каркасе, использовали для равномерного распределения спор B. subtilis на различных субстратах. Пробу объемом 100 мкл л, содержащую 1,35 · 10 ⁶ спор, аспирировали в фильтрованный наконечник пипетки и устанавливали на опору для подачи жидкости распылительной машины. Плотность спор, нанесенных на поверхности, составляла 1,35 · 10 ⁴ см ⁻².В качестве подложек использовались стеклянные предметные стекла, пластины из пчелиного воска, деревянные образцы и соты. После нанесения каждого образца распылительное устройство промывали 3 мл стерильного отфильтрованного этанола (100%) с последующей промывкой 3 мл стерильной воды.

2.4. Плазменный реактор

На рисунке 3 показан DICP. Он состоит из цилиндра из нержавеющей стали, окруженного двумя кварцевыми пластинами. Внутренний диаметр составляет 0,4 м, а высота — 0,2 м, в результате получается объем 25 л. Откачка реактора осуществлялась турбомолекулярным насосом в сочетании с пластинчато-роторным насосом до базового давления 10 ^–4 Па.Во время работы в плазме использовалась комбинация насоса Рутса и пластинчато-роторного насоса для поддержания давления 5–10 Па при потоке газа до 200 см3 / см3. Технологические газы (аргон, водород, азот и кислород) регулировались с помощью регуляторов массового расхода и поступали в реактор через газовый душ. Используемый газовый состав: 125 sccm Ar, 2,5 sccm O ₂, 6 sccm N ₂ при 10 Па и 20 sccm H ₂ при 5 Па. медные змеевики вверху и внизу реактора.Согласующая цепь использовалась для равномерного распределения мощности на каждую катушку и для электрического согласования импеданса плазмы с генератором. Несколько фланцев позволяли проводить диагностику плазмы (например, измерения с помощью зонда Ленгмюра). Исчерпывающую характеристику реактора и более подробное описание можно найти в других источниках [22, 23].

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 3. Изображение установки DICP в разрезе.Тонкие медные змеевики отделены кварцевыми пластинами от внутренней части реактора. Внутренний диаметр сосуда 40 см, внутренняя высота 20 см.

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

2,5. Определение температуры поверхности

Температуру поверхности образцов определяли термометром сопротивления ПТ-100. Температурный зонд был припаян к экранированному кабелю и подключен к электрическому проходу. Сопротивление измеряли каждые 300 мс.Прямое измерение температуры во время непрерывной работы в плазме было невозможно из-за попадания электромагнитных волн в кабель. Измерения проводились сразу после выключения плазмы. Кроме того, материалы были проверены вручную на предмет заметных изменений внешнего вида из-за термического повреждения.

2.6. Стерилизация в плазменном реакторе

Образцы, покрытые спорами, обрабатывали в течение определенного времени в различных условиях плазмы в реакторе DICP.Чтобы учесть различия в покрытии спор, образцы были объединены в пары. Восковые пластинки маркируют стерильным пинцетом, и пластины разрезают пополам с помощью стерильного скальпеля перед покрытием спор. Кусочки дерева и предметные стекла помещали рядом друг с другом в виде помеченных пар перед нанесением спорового покрытия. Половину этих пар использовали в качестве необработанного контрольного образца, тогда как другую половину подвергали обработке плазмой. Количество восстановленных спор из образцов, обработанных плазмой, сравнивали с количеством спор из парного необработанного образца.

2.7. Извлечение спор со стеклянных предметных стекол и прямое извлечение с восковых пластин

Стеклянные предметные стекла, покрытые спорами, и восковые пластины наносили на чашки с агаром LB на 10-минутный период с последующей инкубацией при 37 ° C в течение ночи.

2,8. Извлечение спор с восковых поверхностей

Подсчет спор на восковых поверхностях определяли по методике, опубликованной Bzdil [26]. Три восковых куска с общей поверхностью 37,7 мм ², подвергшиеся воздействию брызг, были удалены с каждой восковой пластины или соты с помощью стерилизованного пробкового сверла диаметром 4 мм.Кусочки воска переносили в пробирку Эппендорфа (1,5 мл) с 850 мк л стерильного A. dest , нагретый до 70 ° C. После добавления 50 мкл л предварительно нагретого до 70 ° C Tween 80 образцы инкубировали в течение 30 минут при 70 ° C и 1000 об / мин в термомиксере. Во время инкубации образцы тщательно перемешивали на вихревой мешалке каждые 10 мин. Затем проводили инкубацию в течение 2–4 часов при комнатной температуре и определяли КОЕ из водной фазы путем серийных разведений, как описано выше.Загрязнение спорами рассчитывали как КОЕ на мм ² поверхности, подверженной распылению, и КОЕ на мг пчелиного воска, соответственно. Из необработанного образца воска мы обычно извлекали около 10 ³ КОЕ на мм ².

2.9. Извлечение спор с деревянных поверхностей

Деревянные образцы переносили в пробирку Falcon объемом 50 мл вместе с 8,5 мл стерильного A. dest и 500 µ l 70 ° C, предварительно нагретого Tween 80. Инкубацию проводили в течение 1 ч, вращение при 37 ° C.Все образцы серийно разбавляли 1: 10 стерильным A. dest и обрабатывали, как описано выше, для определения количества спор.

2.10. Определение количества спор на образцах сот

Образцы воска массой примерно 100 мг каждый были взяты, как описано. Соты разобрали на отдельные части для оценки деревянных образцов. В качестве первоначального контроля, чтобы учесть наличие спор в естественных условиях на сотах, было определено количество спор необработанных образцов сот.Для сравнения одинаковые пары гребней опрыскивали одновременно суспензией спор B. subtilis . Все образцы дополнительно обрабатывали этанолом, как описано, для определения количества эндоспор. Все эксперименты проводили в трех экземплярах.

3.1. Температура образца в DICP остается ниже точки плавления пчелиного воска в условиях, типичных для стерилизационных циклов.

Стерилизация ульевого материала является сложной задачей, но она необходима после вспышки болезней пчел, таких как AFB.При режимах стерилизации, используемых в настоящее время в ветеринарной практике (т.е. термической инактивации с помощью зажигания, автоклавирования или химической инактивации в нагретом щелоке), нежная восковая структура сот неизбежно разрушается. Мы предположили, что стерилизация с использованием «холодной» плазмы, генерируемой в реакторе DICP, может предоставить жизнеспособную, менее разрушительную альтернативу.

Чтобы проверить это, мы сначала определили конечные температуры поверхности образца, достигаемые во время типичных циклов стерилизации в этом плазменном реакторе, с помощью датчика температуры PT-100, размещенного на месте образца.Отправные точки для нашего исследования были основаны на предыдущих экспериментах, проведенных на менее сложных поверхностях, таких как стеклянные предметные стекла [23]. Температура плавления пчелиного воска находится в диапазоне 62–64 ° C. Поэтому мы протестировали несколько условий, стремясь получить максимум энергии, передаваемой заражающим микробам, одновременно избегая термической деформации образцов, содержащих пчелиный воск. Чтобы поддерживать температуру поверхности ниже 62 ° C, использовались две разные процедуры: импульсная плазма с частотой 1 кГц и несколько циклов непрерывной плазмы по 5 с с промежуточным временем охлаждения.В обоих случаях использовалась плазма аргон / кислород / азот (125 sccm Ar, 2,5 sccm O ₂, 6 sccm N ₂) при электрической мощности 10 Па и 1000 Вт. Ранее было показано, что эта газовая смесь эффективна для стерилизации спор B. atrophaeus [27]. Для импульсной плазмы использовалась частота импульсов 1 кГц и скважность импульса от 5 до 40%. Рабочий цикл 10%, который создает серию коротких плазменных импульсов длительностью 10 µ с с прерывистыми промежутками 90 µ с, нагревает поверхность до 51 ° C через 450 с при запуске с комнатной температуры.Это было значительно ниже диапазона плавления пчелиного воска, в то время как более высокие рабочие циклы превышали диапазон плавления (рисунок 4 (а)).

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 4. Температура образца в реакторе DICP во время плазменной обработки. (а) Температура образца в импульсной плазме Ar / O ₂ / N ₂ (1 кГц, разные скважности импульсов). (b) Температура образца в циклической, непрерывной 5-секундной плазме Ar / O ₂ / N ₂ как функция количества циклов и промежутков между циклами.Промежутки времени указаны рядом с соответствующими наборами данных. (c) Температура образца в циклической, непрерывной 5-секундной плазме на основе H ₂ как функция количества циклов и промежутков между циклами. Промежутки времени указаны рядом с соответствующими наборами данных.

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

Циклы непрерывной плазмы создают более интенсивную плазму, доставляя больше излучения и частиц к поверхности образца. Таким образом, мы утверждали, что непрерывная плазма может быть более эффективной в уничтожении спор на материале улья.Однако работа с непрерывной плазмой в течение 45 с (эффективное достижение общего времени плазмы 450 с: 10% включения, 90% импульсной плазмы) приводит к неприемлемо высоким температурам образца. Поэтому мы решили 9 циклов 5-секундной непрерывной плазмы с прерывистыми промежутками, что позволило образцам остыть. Используя промежуток времени 20 с, мы могли поддерживать температуру образца ниже 56 ° C (рисунок 4 (b)).

3.2. Воск — это сложная поверхность.

Чтобы проверить применимость нашего плазменного реактора для стерилизации материалов для ульев, мы сначала создали пластины для пчелиного воска, заливая стерилизованный в автоклаве воск в маленькие чашки Петри.Затем мы разрезаем эти пластины пополам, образуя подходящую пару. Эти согласованные пары затем покрывали спреем, содержащим определенное количество спор B. subtilis . Эти споры, хотя и являются апатогенными, очень похожи на споры P. larvae , возбудителя AFB. Для сравнения эффективности стерилизации различных материалов мы также покрыли согласованную пару предметных стекол суспензией спор B. subtilis . Затем мы подвергли один элемент восковой пластины и пару предметных стекол импульсной плазме (125 sccm Ar, 2.5 sccm O ₂, 6 sccm N ₂ при 10 Па, 1 кГц, скважность импульса 10%, 450 с), в то время как мы оставили другой член пары необработанным. Затем мы поместили восковую пластину и пары слайдов на LB-пластины. Споры будут прорастать на этой среде и образовывать колонии, что дает нам возможность оценить споры, которые пережили плазменную обработку на поверхности воска или стекла. Хотя плазменная обработка значительно уменьшила количество спор на обеих поверхностях, восковые пластины оказались более сложной поверхностью для стерилизации, чем стеклянные предметные стекла (рисунки 5 (a) — (d)).

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 5. Уничтожение спор плазменной обработкой. Соответствующие пары восковых пластинок и предметных стекол покрывали спорами B. subtilis , а затем обрабатывали плазмой или оставляли без обработки. Импульсная плазма (1 кГц, 10%, 90%, 450 с) значительно уменьшила количество спор на пчелином воске ((a) и (b)), но была более эффективной на стеклянных поверхностях ((c) и (d) ).Циклическая непрерывная плазменная обработка (5 с, 20 с, 9 циклов) уничтожает больше спор на пчелином воске ((e) и (f)) и стеклянных поверхностях ((g) и (h)). Обработка образцов в атмосфере низкого давления Ar / O ₂ / N ₂ без плазменного зажигания не повлияла на споры ((i) — (l)).

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

3.3. Циклическая непрерывная плазменная обработка уничтожает споры более эффективно, чем импульсная плазменная обработка.

Затем мы хотели сравнить эффективность циклической, непрерывной плазмы и импульсной плазмы по уничтожению спор.Таким образом, мы использовали условия, установленные при определении температуры образца. Импульсная плазма запускалась в течение 450 с при 125 sccm Ar, 2,5 sccm O ₂, 6 sccm N ₂ при 10 Па, 1 кГц, 10% включения, 90% выключения, в то время как непрерывная плазма запускалась в течение 9 циклов 5 с с перерывами в 20 с при 125 sccm Ar, 2,5 sccm O ₂, 6 sccm N ₂ при 10 Па. Хотя эффективное время воздействия плазмы на образцы было равным (45 с), цикл стерилизации Циклическая непрерывная плазма составляла менее половины длины импульсной плазмы (205 с по сравнению с 450 с).Циклическая непрерывная плазма была более эффективной в уничтожении спор как на пчелином воске, так и на стеклянных поверхностях (рисунки 5 (a) — (h)). Воздействие на эти образцы той же газовой атмосферы низкого давления без воспламенения плазмы не повлияло на споры (рисунки 5 (i) — (l)).

3.4. Плазма на основе водорода более эффективна в уничтожении спор по сравнению с плазмой на основе аргона / кислорода / азота

Хотя мы добились значительного уничтожения спор B. subtilis , мы не были удовлетворены общей эффективностью стерилизации.Таким образом, мы изменили газовую атмосферу со смеси аргон / кислород / азот на водород. Водородная плазма имеет некоторые характеристики, которые делают ее более благоприятной для уничтожения микроорганизмов, а именно усиление вакуумного ультрафиолетового (ВУФ) излучения [22]. Таким образом, мы изменили условия плазмы на 20 sccm H ₂ при 5 Па и 1000 Вт и использовали циклическую, непрерывную плазменную обработку. Давление снижали, чтобы получить интенсивность ВУФ. В этих условиях конечная температура поверхности составила 54 ° C.3 ° C и оставалась значительно ниже 61 ° C (рисунок 4 (c)). Чтобы качественно оценить общее уничтожение спор в наших предыдущих экспериментах, мы поместили покрытые спорами и обработанные плазмой поверхности на чашки, содержащие среду для роста бактерий. Хотя этот метод удобен, он также имеет несколько недостатков. Из-за большого количества колоний на необработанных поверхностях мы не смогли напрямую количественно определить уничтожение спор. Кроме того, если бы споры были покрыты пчелиным воском во время обработки плазмой, а не стали инактивированными, мы не смогли бы идентифицировать их на пластинах со средой.Чтобы количественно оценить эффективность стерилизации, мы решили извлечь споры с восковых поверхностей для наших последующих экспериментов. Этот метод включает плавление и повторное суспендирование пчелиного воска в соответствующих детергентах, эффективно восстанавливая все споры, даже споры, которые были покрыты [26]. Эти споры затем помещали в разведениях на среду LB, что давало нам количественную оценку уничтожения спор путем прямого сравнения с необработанными образцами. Затем мы смогли определить, что замена атмосферы на водород эффективно увеличивает уничтожение спор на два порядка (рис. 6).

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 6. Водородная плазма очень эффективна для уничтожения спор. (а) Сравнение выживаемости спор после обработки циклической непрерывной плазмой в атмосфере Ar / O ₂ / N ₂ или H ₂. Споры были извлечены из определенных участков поверхности совпадающих пар необработанных эталонных (см.) И обработанных плазмой (плазма) пластинок пчелиного воска для определения количества спор на площади поверхности.В то время как плазма на основе Ar / O ₂ / N ₂ снижает количество спор на порядок (b), обработка плазмой на основе H ₂ способна убить более 99% спор (c ).

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

3.5. Большинство спор на восковых поверхностях погибает в течение первых секунд обработки плазмой.

Наши эксперименты показали, что водородная непрерывная циклическая плазма является наиболее эффективным способом уничтожения бактериальных спор на материале улья, при этом сохраняя температуру достаточно низкой, чтобы не допустить. растопить пчелиный воск.Чтобы оценить эффективность уничтожения спор в этих условиях плазмы, мы подвергали образцы пчелиного воска воздействию непрерывной плазмы различной продолжительности в диапазоне от 0,1 до 5 с. Чтобы добиться более продолжительного воздействия плазмы, мы затем прокручивали плазму с 20-секундным перерывом до 12 циклов. Затем количество спор в этих обработанных плазмой образцах сравнивали с количеством спор в подобранном, необработанном образце. Наши эксперименты показывают, что в течение первых 5 с основная масса спор (99% ± 1,4) погибла. Однако оставшиеся споры было гораздо сложнее убить.После 12 циклов непрерывной 5-секундной плазмы на водородной основе мы больше не могли извлекать колониеобразующие споры из наших образцов воска (рис. 7).

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 7. График инактивации спор B. subtilis на пчелином воске. (а) Размещение пластин пчелиного воска внутри реактора DICP. (b) Инактивация спор в образцах пчелиного воска циклической непрерывной плазмой на основе H ₂ в зависимости от количества циклов.После 12 циклов обработки с 5-секундными интервалами никаких спор обнаружено не было.

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

3,6. Еще сложнее уничтожить споры на деревянных поверхностях по сравнению с воском.

Помимо воска, древесина является еще одним важным компонентом материала для ульев. Чтобы проверить эффективность плазменной обработки при стерилизации деревянных поверхностей, мы подготовили пары автоклавированных деревянных деталей, на которые мы нанесли покрытие B.subtilis (рисунок 8 (а)). Затем мы подвергли эти образцы древесины воздействию плазмы, аналогичной образцам пчелиного воска (20 sccm H ₂ при 5 Па и 1000 Вт в циклическом, непрерывном режиме). После плазменной обработки споры были извлечены с поверхности дерева аналогично извлечению из воска. Затем количество спор в образцах, обработанных плазмой, сравнивали с количеством спор в соответствующих образцах древесины, чтобы оценить эффективность уничтожения. Чтобы довести количество спор до 98% ± 1, потребовалось не менее 6 циклов.2. Даже после 12 циклов количество спор уменьшилось всего на 99,75% ± 0,25 (рисунок 8 (b)).

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 8. Инактивация спор B. subtilis на деревянных поверхностях. (а) Подходящая пара деревянных образцов, подготовленных для внесения спор. (b) Инактивация спор на деревянных поверхностях с помощью циклической непрерывной плазмы на основе H ₂.После 12 циклов с 5-секундными интервалами удалялось 99,75% ± 0,25 спор.

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

Однако во время схем стерилизации, используемых в настоящее время в ветеринарной практике (например, термическая инактивация пламенем), которые разрушают восковую структуру сот, но менее разрушительны для древесины, достигается менее эффективное уничтожение спор, составляющее только 84% [18 ].

3,7. Споры уничтожаются на сотах с помощью неразрушающей плазменной обработки.

Воодушевленные нашими результатами на образцах пчелиного воска и древесины, мы хотели проверить эффективность уничтожения спор плазменной обработкой целых сот.Для этого мы использовали миниатюрные соты, построенные пчелами в улье во время медового потока. Перед использованием в наших экспериментах мед был извлечен, а соты возвращены в улей на 2 дня для очистки и ремонта конструкции. Первоначально мы тестировали эти соты на предмет содержания микробов. Нам не удалось извлечь термостойкие колонии (то есть споры) из этих сот, что сделало их пригодными для наших экспериментов по стерилизации. Мы покрыли соты спорами и подвергли их плазменной обработке (20 sccm H ₂ при 5 Па и 1000 Вт в циклическом, непрерывном режиме).Хотя воск не плавился во время плазменной обработки в наших первоначальных экспериментах, мы наблюдали небольшую деформацию сотовой структуры при воздействии более 4 циклов непрерывной плазмы продолжительностью 5 с. Поэтому мы проветривали камеру нашего плазменного реактора каждые 4 цикла, чтобы более эффективно охлаждать сотовые образцы. С помощью нашей плазменной обработки мы смогли значительно уменьшить количество спор, что привело к уменьшению на 99,5% ± 0,14 для пчелиного воска и 98,8% ± 1,2 для деревянных поверхностей сот после 16 циклов непрерывного 5-секундного образца ( рисунок 9).Эта эффективность умерщвления была выше, чем эффективность умерщвления, о которой сообщалось во время режимов стерилизации с использованием химических дезинфицирующих средств, а также методов, используемых в настоящее время в ветеринарной практике [17, 18].

Увеличить Уменьшить Сбросить размер изображения

Рис. 9. Инактивация спор B. subtilis на сотах. Воздействие циклической непрерывной плазмы на основе H ₂ привело к снижению содержания спор на поверхности воска на 99.5% ± 0,14 (а) и на деревянных поверхностях на 98,8% ± 1,2 (б).

Загрузить рисунок:

Стандартный образ Изображение высокого разрешения

Бактериальные споры, такие как споры, образованные P. larvae , возбудителем AFB, сложно убить. Чтобы контролировать вспышки этой подлежащей регистрации болезни пчел, необходимо эффективно инактивировать споры на ульях с пораженных пасек. Методы, используемые в настоящее время в ветеринарной практике для уничтожения спор AFB на материале улья, часто являются разрушительными и / или трудоемкими.Эти методы включают физическую инактивацию нагреванием посредством сжигания или, что менее разрушительно, ожог обработкой пламенем, а также химическую инактивацию в нагретом щелоке. Из-за рабочих условий в поле, где необходимо применять эти инактивирующие микробы контрмеры, их результаты не всегда надежны, и даже в лабораторных условиях сообщалось об эффективности уничтожения спор ниже 85% [18]. Плазменный реактор для развертывания в полевых условиях с хорошо изученным свойством уничтожать споры на этих материалах может поддержать, ускорить и упростить усилия по инактивации в случаях вспышек КУБ.Кроме того, это может помочь сохранить нежную восковую структуру сот. Таким образом, реабилитированная, но ослабленная пчелиная семья может быть заселена, хотя бы частично, на вытянутых рамках. Мы использовали споры организма GRAS B. subtilis для проверки эффективности уничтожения спор реактором DICP на поверхностях, обычно встречающихся на материале ульев.

В зависимости от генотипа споры личинок P. различаются по устойчивости к влажному теплу. Наиболее стойкие из них имеют десятичное значение уменьшения менее 10 мин при 100 ° C влажным теплом при атмосферном давлении [28]. Споры B. subtilis , как известно, имеют в два-три раза большее десятичное время восстановления (20–30 мин) в вышеупомянутых условиях и, таким образом, возможно, более устойчивы [29]. Данные, полученные в наших экспериментах, позволяют предположить, что стерилизация плазмы может стать жизнеспособной альтернативой или расширением методов, используемых в настоящее время для борьбы с КУБ.

Плазменная стерилизация может быть достигнута за счет использования различных концепций реакторов. Поскольку было показано, что другие типы реакторов с неравновесной плазмой эффективно стерилизуют споры бактерий (см.грамм. [30]), реакторы этих типов также потенциально могут быть использованы, если они могут эффективно работать при достаточно низких температурах.

Тем не менее, стерилизация плазмой низкого давления не подходит для стерилизации жидкостей и покрытых поверхностей [31]. УФ / ВУФ-излучение требует прямой видимости цели и может проникать через поверхности только на несколько микрометров, в зависимости от длины волны. Радикалы и другие химически активные частицы, такие как атомы кислорода, не могут диффундировать в объемный материал.Поэтому перед плазменной стерилизацией мед необходимо полностью извлечь из сот. Мед, как правило, по-прежнему заразен для пчелиного расплода, но безопасен для потребления человеком и пригоден для продажи. Точно так же следует отметить, что плазменный реактор, скорее всего, не сможет стерилизовать гнездо расплода. Таким образом, сотовая структура рам, содержащих расплод, должна быть удалена и разрушена, или воск расплавлен и автоклавирован. Сама по себе деревянная рама может быть стерилизована плазмой.

Были использованы другие, нетрадиционные методы стерилизации материала ульев, инфицированных AFB, такие как гамма-облучение [19–21]. Гамма-облучение очень эффективно при стерилизации инфицированного материала ульев, и даже стерилизация сот, содержащих расплод и мед, технически возможна. Это, однако, приводит к гибели расплода и химическим изменениям меда, таким как обесцвечивание, разжижение, образование пузырьков и потеря активности ферментов, обычно присутствующих в меде [32], что, скорее всего, делает мед нерентабельным.Гамма-облучение материала улья коммерчески доступно в качестве услуги в некоторых странах, но обычно выполняется в специализированных учреждениях и не может применяться в полевых условиях.

Хотя плазменная стерилизация потенциально может использоваться в полевых условиях, все еще существуют проблемы, которые необходимо решить до успешного внедрения. Наши эксперименты проводились на стационарном реакторе. В камере реактора можно было разместить только миниатюрные рамы. Для будущего использования в полевых условиях потребуется мобильный плазменный генератор с оптимизированной геометрией камеры, который подходит, по крайней мере, для рам стандартного размера и, предпочтительно, для целых корпусов ульев.По нашим оценкам, материалы для такого реактора должны стоить около 8000 фунтов стерлингов, и из-за необходимости в вакуумном насосе, необходимом газе и электроснабжении фургон или трейлер могут быть оснащены этим реактором для транспортировки. Существующие прицепы, оборудованные для методов, используемых в настоящее время для очистки пасек, пострадавших от AFB, таких как «мобильные пчелы», развернутые сельскохозяйственной палатой и ассоциациями пчеловодов в некоторых землях Германии, потенциально могут быть оснащены этой технологией.

Наши эксперименты дают некоторое представление о процессе инактивации спор плазмой на материале улья. Мы могли бы показать, что циклическая непрерывная плазма приводит к лучшей и более быстрой инактивации, чем импульсная плазма. Сплошная плазма более интенсивна и может доставлять к поверхности больше излучения и частиц. Точно так же плазма на основе водорода более эффективна, чем плазма на основе смеси аргон / кислород / азот. Более высокая доза ВУФ, генерируемая этой плазмой, скорее всего, вызывает более эффективное уничтожение.Ультрафиолетовое излучение является сильнодействующим антибактериальным средством, и было установлено, что оно играет доминирующую роль в плазменной инактивации спор [27, 33]. Тем не менее, синергетические эффекты между частицами и фотонами в плазме являются одним из преимуществ этой технологии перед исключительным использованием УФ [34, 35].

Наши эксперименты показали, что оборудование для ульев, содержащее воск и деревянные поверхности, является сложной задачей для эффективной плазменной стерилизации. При непрерывном циклировании плазмы на основе водорода> 90% спор инактивируются в течение первых 5 секунд на восковых или деревянных поверхностях, но более эффективное уничтожение> 99% достигается только после 12 циклов.Дерево оказалось даже сложнее, чем воск. На последнем мы смогли полностью удалить споры, тогда как на первом небольшое остаточное количество спор оставалось даже во время самой продолжительной обработки, использованной в наших экспериментах. Во время стерилизации путем обжига Dobbelaere и др. наблюдали аналогичное различие между «поверхностными» и «внутренними» спорами на древесине [17]. Эти внутренние споры, по-видимому, являются спорами, закопанными глубже в структуры древесины, где они покрыты плазмой и пламенем.Это может потенциально создать угрозу повторного заражения, если эти «внутренние» споры доступны пчелам.

В этом исследовании мы проверили применимость двойной индуктивно связанной плазмы низкого давления для неразрушающей стерилизации ульевого материала. Оптимизация условий плазмы продемонстрировала, что циклическая непрерывная плазма более эффективна в уничтожении спор, чем импульсная плазма с той же эффективной продолжительностью, и что плазма на основе водорода более эффективна, чем плазма на основе аргона / кислорода / азота.Наши результаты показывают, что лечение DICP может быть жизнеспособной, менее разрушительной альтернативой или расширением процедур стерилизации, используемых в настоящее время в ветеринарной практике. Однако необходимо провести дальнейшие эксперименты с мобильным реактором, чтобы определить применимость плазменной стерилизации в полевых условиях. В конце концов, плазменная обработка могла бы снизить затраты на пасеки, пострадавшие от AFB. Меньший страх перед экономическими потерями и более удобные и эффективные процедуры стерилизации могут дополнительно привести к более строгому соблюдению пчеловодами существующих правил и помочь искоренить это заболевание.

Проект поддержан за счет средств Специального фонда правительства Германии, находящегося в Landwirtschaftliche Rentenbank (номер гранта 782 524 ‘naStrAF’) / Федерального министерства продовольствия и сельского хозяйства Германии (BMEL) Грант BLE 313-06.01-28-RZ-3- 72.014 «NSA» для PA, WHK, PA и LIL, немецкая земля Северный Рейн-Вестфалия (грант Rückkehrerprogramm) для LIL и Немецкий исследовательский фонд (DFG) предоставляют PAK 728.

% PDF-1.4 % 117 0 obj> эндобдж xref 117 71 0000000016 00000 н. 0000002243 00000 н. 0000001716 00000 н. 0000002404 00000 н. 0000002537 00000 н. 0000002636 00000 н. 0000003410 00000 н. 0000003671 00000 н. 0000003724 00000 н. 0000004351 00000 п. 0000004796 00000 н. 0000005038 00000 н. 0000046719 00000 п. 0000046776 00000 п. 0000046942 00000 п. 0000047209 00000 п. 0000047380 00000 п. 0000047565 00000 п. 0000047680 00000 п. 0000047809 00000 п. 0000047942 00000 п. 0000048061 00000 п. 0000048204 00000 п. 0000048361 00000 п. 0000048502 00000 п. 0000048657 00000 п. 0000048792 00000 п. 0000048901 00000 п. 0000049042 00000 н. 0000049225 00000 п. 0000049354 00000 п. 0000049497 00000 п. 0000049626 00000 п. 0000049803 00000 п. 0000049982 00000 н. 0000050164 00000 п. 0000050289 00000 п. 0000050406 00000 п. 0000050521 00000 п. 0000050728 00000 п. 0000050893 00000 п. 0000051078 00000 п. 0000051221 00000 п. 0000051450 00000 п. 0000051583 00000 п. 0000051702 00000 п. 0000051835 00000 п. 0000051988 00000 п. 0000052105 00000 п. 0000052246 00000 п. 0000052373 00000 п. 0000052526 00000 п. 0000052664 00000 п. 0000052819 00000 п. 0000053034 00000 п. 0000053254 00000 п. 0000053403 00000 п. 0000053568 00000 п. 0000053733 00000 п. 0000053925 00000 п. 0000054057 00000 п. 0000054205 00000 п. 0000054380 00000 п. 0000054553 00000 п. 0000054905 00000 п. 0000055039 00000 п. 0000055163 00000 п. 0000055328 00000 п. 0000055453 00000 п. 0000055616 00000 п. 0000055724 00000 п. трейлер ] >> startxref 0 %% EOF 119 0 obj> поток xb«`f«s @ 9 V33G10pr | nS $ y999k8pr7r / JZ)  ձ {o [ڭ Uy,;) jqe0 = p 仐 C7! lH «) ٣X) laǳd, # 3ϸulK /} & 6% @».X KȔ,

Гамма-облученный мед безопаснее сырого меда и обладает такими же антибактериальными свойствами!

Если сырой мед так хорош для нас, зачем нам нужен гамма-облученный мед ? А что такое мед медицинский ?
Хотя этот термин в настоящее время не очень знаком многим, мед медицинского сорта стерилизуется с использованием минимально инвазивного метода: гамма-облучения.

Это может показаться очень токсичным и опасным, но это не так. Это наиболее безопасная форма стерилизации меда с минимальными изменениями в составе меда.И этот мед можно давать и младенцам!

Но если мед обладает кислотностью и высокой вязкостью, которые могут подавлять рост любых микробов, зачем нам стерилизовать мед? Потому что мед может быть заражен спорами (которые содержат бактерии в консервационной форме) Clostridium botulinum, Clostridium tetani, bacillus subtilis или другими.
Посмотрите, что произойдет, если младенцу дать мед, зараженный C. botulinum. И потому, что мед является отличным антибактериальным средством, которое в основном используется для лечения инфицированных ран любого типа.

Этот тип стерилизации используется крупными производителями для производства меда медицинского качества.

Что такое радиация?
Излучение — это процесс испускания энергии в виде частиц или волн. Он может принимать форму звука, тепла или света. Однако под излучением люди обычно понимают излучение электромагнитных волн, радиоволн, микроволн и рентгеновских лучей. Сегодня нас больше беспокоят беспроводные устройства, чем маммография, что в какой-то степени забавно!

Сначала мы должны знать, что атомы образуют основные строительные блоки всей материи.(например, кубик лего, если хотите). В одной ячейке могут быть триллионы атомов.

Атом состоит из ядра, состоящего из положительно заряженных протонов (а иногда и нейтрально заряженных нейтронов) и внешнего облака электронов, которые имеют отрицательный заряд. Положительный заряд одиночного протона равен отрицательному заряду одиночного электрона, хотя ядро (образованное протонами) имеет большой размер и вес, а электроны чрезвычайно малы и легки.

Чистый заряд атома равен нулю из-за природы противоположных зарядов, притягивающих друг друга.

Когда происходит излучение, атом либо теряет, либо приобретает электрон и становится ионом, несущим заряд. Затем он будет искать связи с другими заряженными частицами, чтобы восстановить нейтральный баланс, что может привести к образованию новых молекул.

Неионизирующее излучение означает недостаточную энергию, чтобы сбить электроны с атомов, с которыми оно взаимодействует, или разорвать химические связи в молекулах. Радио- и микроволновая энергия являются неионизирующими излучениями и считаются вредными только в той степени, в которой они передают тепловую энергию всему, на что попадают, например, так, как микроволны готовят пищу.

Ионизирующее излучение вызывается нестабильными атомами, выделяющими энергию для достижения более стабильного состояния, включает изменение основного состава атомов в клетках и, в частности, молекул ДНК внутри клеток, что представляет большую угрозу для здоровья человека. .

Ионизирующее излучение, которое вызывается нестабильными атомами, выделяющими энергию для достижения более стабильного состояния, представляет большую угрозу для здоровья человека, поскольку оно связано с изменением основного состава атомов в клетках и, в частности, молекул ДНК внутри клеток. .Конечно, требуется очень сильная доза радиации, чтобы существенно повредить структуру клетки.

Натуральные продукты, противодействующие побочным эффектам радиации

Правда ли, что рентгеновские лучи вызывают рак через 20 лет? Как мы можем защитить себя от радиации?

Гамма-лучи, рентгеновские лучи, видимый свет и радиоволны — все это формы электромагнитного излучения. Единственная разница — это частота и, следовательно, энергия этих фотонов. Гамма-лучи, как правило, самые энергичные из них.

Стерилизация пищевых продуктов с помощью излучения!

При введении на соответствующем уровне все формы ионизирующего излучения (электронные лучи, рентгеновские лучи и гамма-лучи) могут стерилизовать пищу, а также предметы, включая медицинские инструменты и одноразовые предметы, такие как шприцы.

Ионизирующее излучение может использоваться для уничтожения бактерий в продуктах питания или других органических материалах, включая кровь. Однако облучение пищевых продуктов, хотя и является эффективным, редко используется из-за проблем с общественным признанием.

Все продукты питания, подвергшиеся гамма-облучению, должны иметь этот знак на этикетке.

Что USDA и FSIS (инспекционная служба) признают облучение важной технологией для защиты потребителей? Свежее мясо и домашняя птица, включая целую или разделанную птицу, домашнюю птицу без кожи, свиные отбивные, жаркое, тушеное мясо, печень, гамбургеры, мясной фарш и фарш из домашней птицы допускаются к облучению.

Наиболее часто облучаемые продукты — это фрукты, овощи, птица, рыба, травы / специи.

Что такое гамма-облучение?

Гамма-лучи — это форма электромагнитного излучения, похожего на рентгеновские лучи, но с более высокой энергией. Радиоизотоп кобальт 60 используется в качестве источника энергии при гамма-облучении, причем процесс облучения происходит в специально разработанной ячейке.
Гамма-лучи убивают бактерии, разрывая ковалентные связи бактериальной ДНК. Единица поглощенной дозы — килограмм, выраженный в кГр.Поглощенная доза определяется плотностью продукта, размером упаковки, мощностью дозы, временем воздействия и, в некоторой степени, конструкцией завода.

Преимущества:
· Обладает высокой проникающей способностью. Это позволяет относительно легко обрабатывать умеренно плотные или запечатанные продукты и облегчает обработку продукта на поддонах.
· Это процесс, при котором не выделяется тепло или влага.
· Быстрая окупаемость.
· После облучения нет остаточной радиоактивности.
· Не требует постобработки во время карантина.

Гамма-облучение — это метод, используемый для стерилизации медицинских изделий и фармацевтических препаратов (см. Здесь список наиболее распространенных вещей, стерилизуемых этим методом).

Не меняет ли гамма-излучение свойства меда?

Есть. Маленький. Любое лечение вызывает химические изменения в пище. В разной степени.

Согласно исследованию, опубликованному в 2014 году Hussein S.Z. et al. «Влияет ли гамма-облучение на физико-химические свойства меда?», Гамма-облучение влияет на некоторые изменения в составе меда.
В исследовании проанализированы изменения, произошедшие после гамма-облучения двух видов малазийского меда: Gelam и Nenas.
— Некоторые параметры остались без изменений: pH, кислотность, содержание минералов и сахара.
— Некоторые параметры значительно уменьшились: влажность, содержание витамина E и уровень HMF.
— Некоторые параметры значительно увеличились: интенсивность цвета и содержание витамина C.

Учитывая, что этот мед используется наружно, а не внутренне, эти изменения не влияют на ранозаживляющие свойства меда.

Меняет ли гамма-облучение антибактериальные свойства меда?

№
• Исследование, проведенное Питером Моланом в 1996 году под названием «Влияние гамма-излучения на антибактериальную активность меда», показало, что не было обнаружено значительных изменений ни в одном из типов антибактериальной активности изученных медов. , пероксидная активность (в двух медах с антибактериальной активностью из-за ферментативно генерируемой перекиси водорода) или непероксидная активность (в трех образцах меда манука).

См. Антибактериальные факторы в меде

До и после гамма-облучения образцы были протестированы на наличие некоторых трудно уничтожаемых бактерий.
Мед были протестированы против Staphylococcus aureus и не показали значительного изменения ни одного типа антибактериальной активности в результате этой формы стерилизации меда, даже когда облучение было удвоено (до 50 кГр).

Эффективно ли гамма-облучение при стерилизации меда?

Да. В том же исследовании мед, засеянный спорами Clostridium perfringens и Clostridium tetani (10000 и 1000 спор г-1 меда, соответственно), показали, что гамма-облучение 25 кГр было достаточным для достижения стерильности.

• Исследование Norimah Yusof et al. представленный на Международной ядерной конференции 2002 г. «Облучение меда для пищевых и медицинских целей», проанализировано влияние гамма-излучения на некоторые местные виды меда: Pucuk daun, дуриан, гелам, бунга гелам и асли, а также три импортных меда: манука Клемент, Вайтемата. и Capilani Sweet Meadow.

Результаты показали, что:
— Гамма-облучение при 25 кГр и 50 кГр (в геламе, пучук дауне, дуриане, манука клемент и вайтемата) не повлияло на антибактериальные свойства меда, когда после облучения мед был добавлен в бактериальную суспензию. золотистого стафилококка.
— Нагревание при 50 ° C не уменьшило антибактериальные свойства облученного меда.
— Все местные сорта меда показали антимикробные свойства из-за его высокой лекарственной ценности.

Вывод исследования состоит в том, что «гамма-облучение полезно для обеззараживания меда от патогенных загрязнителей или даже для стерилизации меда для безопасного использования без каких-либо изменений его органолептических и антибактериальных свойств».

• Другое исследование 1995 года, «Стерилизация меда гамма-излучением кобальта 60: исследование меда, содержащего споры Clostridium botulinum и Bacillus subtilis.», Проведенный Постмесом Т. и соавторами, пытается определить минимальную дозу облучения, необходимую для стерилизации.
Для этого они использовали шесть партий меда и облучили их гамма-излучением кобальтом-60 6, 12, 18, 22 и 25 кГр.
— Все партии, зараженные Bacillus subtilis, оказались стерильными после облучения дозой 25 кГр.
— Все сорта меда с добавлением Clostridium botulinum в количестве до 5000 спор на 50 г меда, что является верхним пределом естественного заражения, были стерилизованы всего лишь 18 кГр.

Мед медицинского сорта — это мед, стерилизованный гамма-излучением.

Вот несколько примеров:
— Manukaguard Medical Grade Manuka Honey и очень хороший назальный спрей
— Medihoney
— Activon
— Surgihoney
— Purao
— Revamil
— Meloderm

Все они являются превосходными натуральными продуктами, изготовленными из любого мед манука или другой вид меда с высокими антимикробными свойствами, стерилизованный с помощью гамма-излучения.
И да, Manukaguard Medical Grade Manuka Honey можно давать детям до 1 года.

=============

Другие ссылки:

sciencedirect.com;

link.springer.com;

mirion.com;

Облучение, предложенное Ассоциацией пчеловодов Монтго, штат Пенсильвания

Если вы заинтересованы в участии в нашей программе облучения, вам необходимо подготовить свое оборудование, как указано ниже. Самую свежую информацию, видеоролик о штабелировании поддонов и пошаговое руководство по требованиям к упаковке отдельных ящиков можно найти по адресу: https: // www.montcopabees.org/ и загляните под заголовок Services & Resources for IRRIADIATION

Каждый пчеловод обязан доставить свое оборудование на облучательный объект или принять меры, чтобы это сделал кто-то другой.
Группы или несколько человек должны выбрать региональную промежуточную площадку, расположенную вдали от известных пасек, для загрузки оборудования на любом общем носителе, который они выбрали.
Если ваше оборудование вообще содержит какой-либо мед, и вы используете один поддон с комбинированным оборудованием, каждая отдельная коробка ДОЛЖНА быть завернута в тяжелые пластиковые или толстые пластиковые мешки для мусора, которые завязаны и заклеены лентой.
Вы должны напечатать свое полное имя и номер телефона на каждом элементе оборудования и на куске изоленты, прикрепленной к пластиковым или пластиковым пакетам, в которые оно завернуто.
Специальное примечание : Любое оборудование улья, о котором известно, что оно заражено американским гнильцем, ДОЛЖНО быть плотно обернуто и заклеено лентой, закрытой толстым 4-миллилитровым пластиковым или двойным пластиковым пакетом, прежде чем оно будет доставлено в любое место хранения, где объединяется оборудование из разных пчеловоды. Поддоны из одного источника с оборудованием для ульев, о котором известно, что оно заражено американским гнильцем, необходимо укладывать на поддоны в соответствии со всеми протоколами .

** НЕ отправляйте оборудование с живыми муравьями, насекомыми, мышами, гнездами мышей или другим рыхлым мусором. Он будет отклонен от загрузки. **

Извлеките мед из сот или приготовьте для упаковки суперсупер по отдельности (о супервизоре см. Прилагаемую инструкцию).
Упакуйте рамы в соответствующие ульи.
Используйте стандартные четырехсторонние поддоны (40 «X 48»). НЕ МЕНЬШЕ или БОЛЬШЕ.
Поддоны должны быть в хорошем состоянии, без камней, земли и мусора.

Sterigenics больше не разрешает штабелировать и упаковывать ульи на участке . Следовательно, вы должны доставить все оборудование ульев должным образом сложенным и упакованным в эластичную пленку и готовым к разгрузке вилочным погрузчиком на предприятии. Для обработки все собранное оборудование должно быть уложено на стандартные поддоны 48 ″ x 40 ″, покрытые одним листом плотного картона, обернутым в термоусадочную пленку, с верхним и нижним листами пластика толщиной 4 мил, прежде чем может произойти обработка в Sterigenics.Вы должны выполнить следующие необходимые шаги, чтобы подготовить оборудование к переработке:

Накройте верх поддона одним листом плотного картона. Вы не можете склеивать или склеивать картон, чтобы закрыть поддон.

Поддон и картон должны быть покрыты одинарным листом тяжелого пластика объемом 4 мл с отверстиями без отверстий , который выходит за пределы поддона со всех сторон на 12 дюймов, который затем поднимается по сторонам штабелированного оборудования.Это необходимо для предотвращения вытекания жидкого меда. Смотреть видео.

Сложите ульи в стопку по 6 столбцов. Надстройки могут выступать за размер 48 дюймов на 1/2 дюйма. В размере 40 дюймов вообще не может быть свеса. Все ручки шипов или крепежные крючки, которые выступают за лицевую поверхность суперкара или выводка, ДОЛЖНЫ быть удалены. Если оборудование поставляется с ручками с планками или стяжными крюками, которые выходят за пределы площади основания поддона, этот поддон не может быть обработан.

Общая высота штабелированного ульевого оборудования , включая поддон , не может превышать 78 дюймов (6 футов 6 дюймов).

Закройте штабелированное оборудование толстым пластиковым листом толщиной 4 мил, чтобы продлить на 12 дюймов с каждой стороны штабелированного оборудования.

Все оборудование должно быть плотно обернуто сверху вниз перед тем, как обернуть верхний и нижний лист пластмассой.

Вытяните нижний лист пластика на 12 дюймов вверх по стопке снаружи первого слоя термоусадочной пленки.

Снова сложите термоусадочную пленку, убедившись, что верхний и нижний листы пластика закрыты вторым слоем термоусадочной пленки.

ВАЖНАЯ ИНФОРМАЦИЯ: НЕ ПРЕВЫШАЙТЕ ОБЩИЙ ВЕС НА ПОДДОНЕ НА 1500 ФУНТОВ из-за ограничений по весу носителей, используемых в камере облучения.

В вашем улье и на поддоне не должно быть живых насекомых или мышей. В таком случае он будет отклонен и не обработан.Это может привести к отклонению всего прогона.

Особое примечание : Чтобы предотвратить распространение болезни, на любом участке, где собирают улейное оборудование от разных пчеловодов, должен использоваться брезент большой толщины, чтобы защитить место от заражения путем штабелирования и упаковки всех поддонов на брезент. На земле нельзя устанавливать загрязненное оборудование. В конце процесса укладки на поддоны брезент необходимо аккуратно сложить и уложить поверх последнего поддона, который необходимо облучить и продезинфицировать вместе с оборудованием улья.

Транспортировка оборудования в Sterigenics

Нам необходимо иметь как минимум 7 поддонов оборудования, чтобы обеспечить минимальную стоимость на поддон и сделать «пробег» облучением практичным и экономичным. Лица, которые будут нести ответственность за объединение подготовленного оборудования и его доставку в Sterigenics, должны соблюдать приведенные ниже правила подготовки и доставки. Обратите внимание: на протяжении многих лет сотрудники центра Salem, NJ Sterigenics, очень много работали, чтобы удовлетворить наши особые потребности и позволить нам работать с ними на этом ежегодном мероприятии.В качестве жеста доброй воли мы ежегодно предоставляем каждому сотруднику компании Sterigenics по 1 фунтовой банке местного меда от каждого участвующего пчеловода. Убедитесь, что вы принесли банку или отправили банку меда для добрых людей из Sterigenics, чтобы тот, кто перевозил ваше улейное оборудование .

Четко промаркируйте и обозначьте все оборудование на каждой стороне стопки полной бумагой размером 8,5 x 11 дюймов с жирным шрифтом. Перед упаковкой в термоусадочную пленку приклейте эту этикетку к оборудованию на уровне глаз.(Примечание: если вы буксируете в дождь или плохую погоду, имейте под рукой дополнительные этикетки, которые можно вставить на погрузочной платформе на случай, если первый комплект нечитаем, или поместите этикетки в прозрачные пластиковые рукава перед использованием.)
Любые поддоны с комбинированным оборудованием от нескольких пчеловодов должны иметь каждую коробку, помеченную именем и фамилией владельца оборудования на оборудовании и / или пластиковой упаковке отдельных коробок.
Максимально допустимая высота штабелированного оборудования, включая поддон, составляет 6 футов 6 дюймов.
Сообщите Марку Антунес, что отгрузка запланирована так, чтобы можно было подтвердить дату отгрузки / обработки.
Погрузочная платформа: грузовики разгружаются в задней части здания, низкорамные грузовики и трейлеры выгружаются перед зданием.
Для доставки оборудования, которое, как известно, содержит AFB и предотвращает повторное заражение; Настоятельно рекомендуется облицевать средство доставки пластиком или картоном, чтобы предотвратить загрязнение средства доставки, а затем уничтожить этот вкладыш после доставки.
Запланируйте свое прибытие в правильную дату с Марком Антунесом в Sterigenics Corporation, 75 Tilbury Road, Salem, NJ 08079.

(PDF) Стерилизация материала улья двойной индуктивно связанной плазмой низкого давления

M Priehn etal

Огненная обработка. Это потенциально может представлять угрозу повторного заражения, если эти «внутренние» споры доступны пчелам.

5. Заключение

В этом исследовании мы проверили применимость двойной индуктивно связанной плазмы низкого давления для неразрушающей стерилизации

материала улья.Оптимизация условий плазмы

продемонстрировала, что циклическая непрерывная плазма на

более эффективна в уничтожении спор, чем импульсная плазма с такой же эффективной продолжительностью

, и что плазма на основе водорода на

более эффективна, чем плазма аргон / кислород. / азотная плазма.

Наши результаты показывают, что лечение DICP может быть жизнеспособной, менее разрушительной альтернативой или расширением процедур стерилизации

, используемых в настоящее время в ветеринарной практике.Однако необходимо провести еще

экспериментов с мобильным реактором, чтобы определить применимость плазменной стерилизации в поле

В конечном итоге плазменная обработка могла бы снизить расходы, которые несут

пасек, пострадавших от AFB. Меньше страха перед экономическими потерями и

более удобные и эффективные процедуры стерилизации могут дополнительно привести к более строгому соблюдению пчеловодами требований

существующих правил и помочь искоренить это заболевание.

Выражение признательности

Проект был поддержан за счет средств Фонда специального назначения правительства Германии

, находящегося в Landwirtschaftliche

Rentenbank (номер гранта 782 524 ‘naStrAF’) / Немецкое

Федеральное министерство продовольствия и сельского хозяйства (BMEL) BLE

Grant 313-06.01-28-RZ-3-72.014 «NSA» для PA, WHK,

PA и LIL, немецкая земля Северный Рейн-Вестфа-

lia (Rückkehrerprogramm Grant) LIL и Германии

Исследовательский фонд (DFG) предоставил PAK 728.

Источники

[1] GallaiN, SallesJ-M, SetteleJ и VaissièreBE 2009

Экономическая оценка уязвимости мирового сельского хозяйства

столкнулся с сокращением количества опылителей Ecol. Экон. 68810–21

[2] vanEngelsdorpD и MeixnerMD 2010 Исторический обзор

управляемых популяций медоносных пчел в Европе и

США и факторы, которые могут на них повлиять

J. Invertebr . Патол. 103S80–95

[3] GenerschE 2010 American Foulbrood у медоносных пчел и его возбудитель

, личинки Paenibacillus J.Invertebr. Патол.

103S10–9

[4] WoodrowAW 1942 Чувствительность личинок медоносных пчел к

индивидуальным прививкам спорами личинок Bacillus

J. Econ. Энтомол. 35892–5

[5] BrødsgaardCJ, RitterW and HansenH 1998 Ответ

выращенных in vitro личинок медоносных пчел на различные дозы

Paenibacillus larvae larvae spores Apidologie 29569–78

[6] WilsonTW 1971 Устойчивость американского гнильца в меде

пчелы.XI. Судьба спор личинок Bacillus, попавших в организм взрослых особей

J. Invertebr. Патол. 17247–55

[7] HansenH и BrødsgaardCJ 1999 Американский гнилец: обзор

его биологии, диагностики и контроля Bee World 805–23

[8] HansenH и BrødsgaardCJ 2001 Мировое распространение,

раннее обнаружение и борьба с American Foulbrood Proc.

37-й межд. Конгресс пчеловодства (Дурбан, Южная Африка, 28

, октябрь – 1 ноября 2001 г.)

[9] ШиманукиХ и НоксадА, 1997 г. Здоровье пчел и международное сотрудничество

trade Rev.-Выключенный. Int. Эпизоот. 16172–6

[10] de GraafDC etal 2006 Диагностика американского гнильца у

медоносных пчел: синтез и предлагаемые аналитические протоколы

Lett. Прил. Microbiol. 43583–90

[11] MiyagiT, PengC, ChuangR, MussenE, SpivakM и

DoiR 2000 ПРИМЕЧАНИЕ. Подтверждение устойчивости к окситетрациклину

Американского патогена, вызывающего гниение, Paenibacillus. личинки в

США J. Invertebr. Патол. 7595–6

[12] AlippiAM 2000 Террамицин® теряет свою эффективность

против AFB? Bee Biz 11 27–9

[13] TianB, FadhilNH, PowellJE, KwongWK и MoranNA

2012 Долгосрочное воздействие антибиотиков вызвало

Накопление детерминант резистентности в кишечнике

Микробиота медоносных пчел mBio 31–7

[14] Регламент Комиссии ЕС № 37/2010 2009

Фармакологически активные вещества и их классификация

относительно предельно допустимых остатков в пищевых продуктах животного происхождения

Офф.J. Eur. Union L151–72

[15] NicholsonWL, Fajardo-CavazosP, RebeilR, SliemanTA,

RiesenmannPJ, LawJF и XueY 2002 Бактериальные

эндоспоры и их значение для устойчивости к стрессу

Антони ван Левенгук 8127–32

[16] Фон дер Охев 2003 Борьба с американскими гнильцами с помощью

с использованием альтернативного метода уничтожения и искусственного роя.

Apiacta 38137–9

[17] DobbelaereW, de GraafDC, ReybroeckW, DesmedtE,

PeetersJE и JacobsFJ 2001 Дезинфекция дерева

структуры, зараженные личинками Paenibacillus подвид.

споры личинок J. Appl. Microbiol. 91212–6

[18] BrødsgaardCJ and HansenH 1999 Обеззараживание

ульев, содержащих споры гнилецовых бактерий

Paenibacillus larvae, личинки Apiacta 1–4

[19H] Katznelson JA 1962 Использование гамма-излучения

из кобальта-60 для борьбы с болезнями пчел

и стерилизации банок с медом. J. Microbiol. 8175–9

[20] HornitzkyMAZ и WillsPA 1983 Гамма-излучение

инактивация личинок Bacillus для борьбы с американскими

Foulbrood J.Apic. Res. 22196–9

[21] Де ГусманЗМ, СервансиаКР, ДимасуайКГ,

ТолентиноММ, АбрераГБ, КобарМЛ, Фахардо AC

Jr, SabinoNG, Manila-FajardoAC и FelicianoCP

2011 Радиационная инактивация личинок Paenibacillus и

стерилизация ульев, инфицированных американским гнильцем (AFB)

с использованием гамма-лучей Co-60 Прил. Radiat. Изот. 691374–9

[22] DenisB, StevesS, SemmlerE, BibinovN, NovakW и

AwakowiczP 2012 Плазменная стерилизация фармацевтических препаратов

продуктов: от основ до производства Плазменный процесс .Polym.

9619–29

[23] HalfmannH, BibinovN, WunderlichJ и AwakowiczP 2007

Двойная индуктивно связанная плазма для стерилизации

медицинских устройств J. Phys. D: Прил. Phys. 404145–54

[24] HarwoodCR and CuttingSM (ed) 1991 Molecular

Biological Methods for Bacillus (Chichester: Wiley) p 393,

394, 415

[25] KoranskyJR, AllenSD и DowellVRJ 1978 Использование

этанола для селективной изоляции спорообразующих

микроорганизмов Прил.Environ. Microbiol. 35762–5

[26] BzdilJ 2007 Обнаружение спор личинок Paenibacillus в остатках

и воске медоносной пчелы методом Tween 80 Acta

Вет. Брно 76643–8

[27] HalfmannH, DenisB, BibinovN, WunderlichJ и

AwakowiczP 2007 Определение наиболее эффективного

VUV / UV излучения для плазмы на основе инактивации

спор Bacillus atrophaeus J. Phys. D: Прил. Phys.

405907–11

[28] ForsgrenE, StevanovicJ и FriesI, 2008 г. Изменчивость прорастания

, а также устойчивости к температуре и хранению

среди генотипов личинок Paenibacillus Вет.Microbiol.

129342–9

J. Phys. D: Прил. Phys. 49 (2016) 374002

Новый пробиотический подход к борьбе с инфекцией личинок Paenibacillus у медоносных пчел

Mordecai GJ, Wilfert L, Martin SJ, Jones IM, Schroeder DC. Разнообразие патогенов медоносных пчел: первое сообщение о третьем главном варианте квазивидов вируса деформированного крыла. ISME J. 2016; 10: 1264–73.

CAS PubMed Google ученый

Ли К.В., Штайнхауэр Н., Ренних К., Уилсон М.Э., Тарпи Д.Р., Карон Д.М. и др. Национальное исследование ежегодных потерь колоний пчел, выращиваемых в США, в 2013–2014 гг. Apidologie. 2015; 46: 292–305.

Google ученый

Traynor KS, Rennich K, Forsgren E, Rose R, Pettis J, Kunkel G, et al. Многолетнее исследование заболеваемости медоносных пчел в США. Apidologie. 2016; 47: 325–47.

Google ученый

Zee R, van der, Pisa L, Andonov S, Brodschneider R, Charrière J-D, Chlebo R, et al. Устранение потерь колоний медоносных пчел в Канаде, Китае, Европе, Израиле и Турции за зимы 2008–2009 и 2009–10 годов. J Apic Res. 2012; 51: 100–14.

Google ученый

Гоулсон Д., Николлс Э., Ботиас С., Ротери ЭЛ. Снижение численности пчел вызвано комбинированным стрессом от паразитов, пестицидов и отсутствия цветов. Наука. 2015; 347: 1255957.

PubMed Google ученый

Поппинга Л., Генерш Э. Молекулярный патогенез американского гнилеца: как личинки Paenibacillus убивают личинок медоносных пчел. Curr Opin Insect Sci. 2015; 10: 29–36.

PubMed Google ученый

Генерш Э., Аширалиева А., Фрайз И. Штамм- и генотип-специфические различия вирулентности личинок Paenibacillus subsp. личинки , бактериальный патоген, вызывающий американскую гнильцу у медоносных пчел.Appl Environ Microbiol. 2005. 71: 7551–5.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

Раух С., Аширалиева А., Хедтке К., Генерш Э. Отрицательная корреляция между вирулентностью на уровне отдельных насекомых и вирулентностью на уровне колоний личинок Paenibacillus , этиологического агента американского гнильца медоносных пчел. Appl Environ Microbiol. 2009. 75: 3344–7.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

Genersch E. Американский гнилец у медоносных пчел и его возбудитель, личинки Paenibacillus . J Invertebr Pathol. 2010; 103: S10–19.

PubMed Google ученый

10.

Шекуля Д., Пичхакер Х., Личек Э. Передача личинок Paenibacillus спор через социальные контакты внутри пчелиных семей ( Apis mellifera carnica, Pollmann 1879). Zb Veleuč U Rijeci. 2013; 1: 321–35.

Google ученый

11.

Петерс М., Килвински Дж., Берингхофф А., Реклинг Д., Генерш Э. Американский гнилец медоносной пчелы: встречаемость и распространение различных генотипов личинок Paenibacillus в административном районе Арнсберг (Северный Рейн-Вестфалия). J Vet Med B Infect Dis Vet Public Health. 2006; 53: 100–4.

CAS PubMed Google ученый

12.

Эрбан Т., Ледвинка О., Камлер М., Несворна М., Хортова Б., Тыл Дж. И др.Бактериальное сообщество, ассоциированное с пчелами ( Apis mellifera ), пораженное американскими гнильцами: обнаружение личинок Paenibacillus с помощью анализа микробиома. Научный доклад 2017; 7: 5084.

PubMed PubMed Central Google ученый

13.

Кочанский Дж., Нокс Д.А., Фельдлауфер М., Петтис Дж. С.. Скрининг альтернативных антибиотиков против чувствительных к окситетрациклину и резистентных Paenibacillus larvae . Apidologie.2001; 32: 215–22.

CAS Google ученый

14.

Спивак М., Рейтер Г.С. Устойчивость колоний медоносных пчел к американскому гнильцу Apis mellifera , выведенного для соблюдения гигиены. Apidologie. 2001. 32: 555–65.

Google ученый

15.

González MJ, Marioli JM. Антибактериальная активность водных экстрактов и эфирных масел различных ароматических растений против личинок Paenibacillus , возбудителя американского гнильца.J Invertebr Pathol. 2010; 104: 209–13.

PubMed Google ученый

16.

Beims H, Wittmann J, Bunk B, Spröer C, Rohde C, Günther G, et al. Личинки Paenibacillus -направленный бактериофаг HB10c2 и его применение на личинках медоносных пчел, пораженных американским гнильцем. Appl Environ Microbiol. 2015; 81: 5411–9.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

17.

Альварадо I, Марготта Дж. У., Аоки М. М., Флорес Ф., Агудело Ф., Мишель Дж. И др. Ингибирующее действие аналогов индола в отношении личинок Paenibacillus , возбудителя американской гнилиц. J Insect Sci. 2017; 17: 104–12.

Google ученый

18.

Триндер М., Бисанц Дж. Э., Бертон Дж. П., Рид Г. Пробиотические лактобациллы: потенциальное профилактическое средство для снижения абсорбции пестицидов людьми и дикой природой. Benef Microbes.2015; 6: 841–7.

CAS PubMed Google ученый

19.

Дейсли Б.А., Триндер М., Макдауэлл Т.В., Велле Х., Дубе Дж. С., Али С. Н. и др. Индуцированная неоникотиноидами восприимчивость к патогенам снижается с помощью иммунной стимуляции Lactobacillus plantarum в модели Drosophila melanogaster . Научный доклад 2017; 7: 2703.

PubMed PubMed Central Google ученый

20.

Триндер М., Макдауэлл Т.В., Дейсли Б.А., Али С.Н., Леонг Х.С., Сумара М.В. и др. Пробиотик Lactobacillus rhamnosus снижает абсорбцию и токсичность фосфорорганических пестицидов до Drosophila melanogaster . Appl Environ Microbiol. 2016; 82: 6204–13.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

21.

Васкес А., Олофссон Т.С., Самматаро Д. Научная заметка о молочнокислой бактериальной флоре медоносных пчел в США — сравнение с пчелами из Швеции.Apidologie. 2009; 40: 26–8.

Google ученый

22.

Васкес А., Форсгрен Э., Фрис И., Пакстон Р.Дж., Флаберг Э., Секели Л. и др. Симбионты как основные модуляторы здоровья насекомых: молочнокислые бактерии и медоносные пчелы. PLoS ONE. 2012; 7: e33188.

PubMed PubMed Central Google ученый

23.

Баффони Л., Гаггиа Ф., Альберони Д., Каббри Р., Нанетти А., Биавати Б. и др.Влияние пищевых добавок штаммов Bifidobacterium и Lactobacillus на Apis mellifera L. против Nosema ceranae . Benef Microbes. 2016; 7: 45–51.

CAS PubMed Google ученый

24.

Берриос П., Фуэнтес Дж. А., Салас Д., Карреньо А., Альдеа П., Фернандес Ф. и др. Ингибирующий эффект образующих биопленку штаммов Lactobacillus kunkeei против вирулентной Pseudomonas aeruginosa in vitro и модели инфекции пчелиных сот ( Galleria mellonella ).Benef Microbes. 2018; 9: 257–68.

PubMed Google ученый

25.

Tian B, Fadhil NH, Powell JE, Kwong WK, Moran NA. Длительное воздействие антибиотиков привело к накоплению детерминант устойчивости в кишечной микробиоте медоносных пчел. mBio. 2012; 3: e00377–12.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

26.

Kaznowski A, Szymas B, Jazdzinska E, Kazimierczak M, Paetz H, Mokracka J.Влияние пробиотических добавок на содержание микрофлоры кишечника и химический состав рабочих медоносных пчел ( Apis mellifera ). J Apic Res. 2005; 44: 10–4.

Google ученый

27.

de Graaf DC, Alippi AM, Antúnez K, Aronstein KA, Budge G, Koker DD, et al. Стандартные методы исследования американского гнильца. J Apic Res. 2013; 52: 1–28.

Google ученый

28.

Дэйсли Б.А., Триндер М., МакДауэлл Т.В., Коллинз С.Л., Сумара М.В., Рид Г. Микробиота-опосредованная модуляция токсичности фосфорорганических инсектицидов за счет видозависимых взаимодействий лактобацилл на модели насекомых Drosophila melanogaster . Appl Environ Microbiol. 2018; 84: e02820–17.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

29.

Versalovic J, Schneider M, Bruijn FJD, Lupski JR. Геномный фингерпринт бактерий с использованием полимеразной цепной реакции на основе повторяющихся последовательностей.Методы Mol Cell Biol. 1994; 5: 25-40.

CAS Google ученый

30.

Пауэлл Дж. Э., Мартинсон В. Г., Урбан-Мид К., Моран Н. А.. Пути получения микробиоты кишечника медоносной пчелы Apis mellifera . Appl Environ Microbiol. 2014; 80: 7378–87.

PubMed PubMed Central Google ученый

31.

Kešnerová L, Mars RAT, Ellegaard KM, Troilo M, Sauer U, Engel P.Выявление метаболических функций бактерий в кишечнике медоносной пчелы. PLoS Biol. 2017; 15: e2003467.

PubMed PubMed Central Google ученый

32.

Мартинсон В.Г., Мой Дж., Моран Н.А. Установление характерных кишечных бактерий во время развития пчелы. Appl Environ Microbiol. 2012; 78: 2830–40.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

33.

Уокер Д.И., Маккуиллан Дж., Тайво М., Паркс Р., Стентон, Калифорния, Морган Х. и др. Высокоспецифичный Escherichia coli qPCR и его сравнение с существующими методами для экологических вод. Water Res. 2017; 126: 101–10.

CAS PubMed Google ученый

34.

Капорасо Дж. Г., Лаубер К. Л., Уолтерс В. А., Берг-Лайонс Д., Хантли Дж., Фирер Н. и др. Сверхвысокопроизводительный анализ микробного сообщества на платформах Illumina HiSeq и MiSeq.ISME J. 2012; 6: 1621–4.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

35.

Каллахан Б.Дж., Макмерди П.Дж., Холмс С.П. Варианты точных последовательностей должны заменять рабочие таксономические единицы в анализе данных маркерных генов. ISME J. 2017; 11: 2639–43.

PubMed PubMed Central Google ученый

36.

Newton IL, Roeselers G. Влияние обучающего набора на классификацию микробиоты кишечника медоносных пчел с использованием наивного байесовского классификатора.BMC Microbiol. 2012; 12: 221.

PubMed PubMed Central Google ученый

37.

Yoshiyama M, Wu M, Sugimura Y, Takaya N, Kimoto-Nira H, Suzuki C. Ингибирование личинок Paenibacillus молочнокислыми бактериями, выделенными из ферментированных материалов. J Invertebr Pathol. 2013; 112: 62–7.

CAS PubMed Google ученый

38.

Cornman RS, Lopez D, Evans JD.Транскрипционный ответ личинок медоносных пчел, инфицированных бактериальным патогеном Paenibacillus larvae . PLoS ONE. 2013; 8: e65424.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

39.

Hu Y-T, Wu T-C, Yang E-C, Wu P-C, Lin P-T, Wu Y-L. Регулирование генов, связанных с передачей иммунных сигналов и детоксикацией в Apis mellifera с помощью ингибитора деацетилирования гистонов. Научный доклад 2017; 7: 41255.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

40.

Бастин С.А., Бенес В., Гарсон Дж., Хеллеманс Дж., Хаггетт Дж., Кубиста М. и др. Рекомендации MIQE: минимум информации для публикации количественных экспериментов ПЦР в реальном времени. Clin Chem. 2009; 55: 611–22.

CAS PubMed Google ученый

41.

Schmittgen TD, Livak KJ. Анализ данных ПЦР в реальном времени с помощью сравнительного прибора C _Т метод. Nat Protoc. 2008; 3: 1101–8.

CAS PubMed Google ученый

42.

Triant DA, Whitehead A. Одновременное извлечение высококачественной РНК и ДНК из небольших образцов тканей. J Hered. 2009; 100: 246–50.

CAS PubMed Google ученый

43.

Genersch E, Forsgren E, Pentikäinen J, Ashiralieva A, Rauch S, Kilwinski J, et al. Реклассификация личинок Paenibacillus subsp. pulvifaciens и Paenibacillus larvae subsp. личинок как личинок Paenibacillus без подвидовой дифференциации.Int J Syst Evol Microbiol. 2006; 56: 501–11.

CAS PubMed Google ученый

44.

Gloor GB, Reid G. Композиционный анализ: действенный подход к анализу данных высокопроизводительного секвенирования микробиома. Может J Microbiol. 2016; 62: 692–703.

CAS PubMed Google ученый

45.

Gloor GB, Macklaim JM, Pawlowsky-Glahn V, Egozcue JJ. Наборы данных микробиома являются композиционными, и это не обязательно.Front Microbiol. 2017; 8: 1–6.

Google ученый

46.

Evans JD, Lopez DL. Бактериальные пробиотики вызывают иммунный ответ у медоносной пчелы (Hymenoptera: Apidae). J Econ Entomol. 2004. 97: 752–6.

CAS PubMed Google ученый

47.

Форсгрен Э., Олофссон Т.С., Вааскес А., Фрис I. Новые молочнокислые бактерии, ингибирующие личинок Paenibacillus в личинках медоносных пчел.Apidologie. 2010. 41: 99–108.

Google ученый

48.

Чан К.В., Мелатопулос А.П., Пернал С.Ф., Фостер Л.Дж. Врожденный иммунитет и системный ответ медоносных пчел на бактериальный патоген Paenibacillus larvae . BMC Genomics. 2009; 10: 387.

PubMed PubMed Central Google ученый

49.

Арредондо Д., Кастелли Л., Поррини М.П., Гарридо П.М., Эгуарас М.Дж., Зунино П. и др. Штаммы Lactobacillus kunkeei уменьшили заражение патогенами медоносных пчел Личинки Paenibacillus и Nosema ceranae . Benef Microbes. 2017; 9: 279–90.

PubMed Google ученый

50.

Стефан Дж. Г., Ламей С., Петтис Дж. С., Рисбек К., де Миранда Дж. Р., Форсгрен Э. Пищевые добавки с молочнокислыми бактериями, специфичными для пчел, не влияют на колонии пчел, инфицированных американскими гнильцами. Appl Environ Microbiol.2019; 85: e00606–19.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

51.

Пташинская А.А., Борсук Г., Здыбицка-Барабас А., Цитринска М., Малек В. Эффективны ли коммерческие пробиотики и пребиотики для лечения и профилактики ноземоза медоносных пчел? Parasitol Res. 2016; 115: 397–406.

PubMed Google ученый

52.

Шин Н.Р., Уон ТВ, Бэ Дж-В.Протеобактерии: микробный признак дисбактериоза кишечной микробиоты. Trends Biotechnol. 2015; 33: 496–503.

CAS PubMed Google ученый

53.

Moon CD, Young W, Maclean PH, Cookson AL, Bermingham EN. Метагеномное понимание роли протеобактерий в микробиомах желудочно-кишечного тракта здоровых собак и кошек. Microbiologyopen. 2018; 7: e00677.

PubMed PubMed Central Google ученый

54.

Fleming JC, Schmehl DR, Ellis JD. Характеристика влияния кормов на основе коммерческих заменителей пыльцы на уровень Nosema spp. у медоносных пчел ( Apis mellifera L.). PLoS ONE. 2015; 10: e0132014.

PubMed PubMed Central Google ученый

55.

ДеГранди-Хоффман Г., Чен И., Ривера Р., Кэрролл М., Чемберс М., Идальго Г. и др. Семейства медоносных пчел, получающие натуральный корм, имеют более низкую нагрузку патогенными микроорганизмами и более высокую выживаемость в течение зимы, чем те, которые получали протеиновые добавки.Apidologie. 2016; 47: 186–96.

CAS Google ученый

56.

Billiet A, Meeus I, Cnockaert M, Vandamme P, Oystaeyen AV, Wäckers F, et al. Влияние перорального введения молочнокислых бактерий на производительность колоний и микробиоту кишечника у шмелей, выращиваемых в помещении ( Bombus terrestris ). Apidologie. 2017; 48: 41–50.

Google ученый

57.

Патруика С., Думитреску Г., Попеску Р., Филимон Н.М.Влияние пребиотических и пробиотических продуктов, используемых в кормах для стимуляции колонии пчел ( Apis mellifera ) на кишечнике рабочих пчел. J Food Agric Environ. 2013; 11: 2461–4.

Google ученый

58.

Сихаг Р.К., Гупта М. Разработка искусственного заменителя пыльцы / дополнительного питания для поддержки колоний медоносных пчел ( Apis mellifera L.) в сезон неурожая. J Apic Sci. 2011; 55: 15–29.

Google ученый

59.

Квонг Валдан К., Манленидо Аманда Л., Моран Нэнси А. Стимуляция иммунной системы естественной микробиотой кишечника медоносных пчел. R Soc Open Sci. 2017; 4: 170003.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

60.

Crane JK, Naeher TM, Broome JE, Boedeker EC. Роль ксантиноксидазы хозяина в инфекции, вызванной энтеропатогенными и шига-токсигенными Escherichia coli . Заражение иммунной. 2013; 81: 1129–39.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

61.

Альварадо I, Фуи А., Элеконич М.М., Абель-Сантос Э. Требования для прорастания in vitro спор личинок Paenibacillus . J Bacteriol. 2013; 195: 1005–11.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

62.

Кох Х., Шмид-Хемпель П. Социально передаваемая кишечная микробиота защищает шмелей от кишечных паразитов. Proc Natl Acad Sci USA. 2011; 108: 19288–92.

CAS PubMed Google ученый

63.

Райманн К., Шаффер З., Моран Н.А. Воздействие антибиотиков нарушает микробиоту кишечника и увеличивает смертность пчел. PLoS Biol. 2017; 15: e2001861.

PubMed PubMed Central Google ученый

64.

Schwarz RS, Moran NA, Evans JD. Ранние колонизаторы кишечника формируют восприимчивость к паразитам и состав микробиоты у рабочих медоносных пчел. Proc Natl Acad Sci USA. 2016; 113: 9345–50.

CAS PubMed Google ученый

65.

Хамди С., Баллой А., Эссана Дж., Кротти Е., Гонелла Е., Раддади Н. и др. Дисбактериоз кишечного микробиома и здоровье пчел. J Appl Entomol. 2011; 135: 524–33.

Google ученый

66.

Джанашиа И., Алаукс К. Специфическая иммуностимуляция эндогенными бактериями у медоносных пчел (Hymenoptera: Apidae). J Econ Entomol. 2016; 109: 1474–7.

CAS PubMed Google ученый

67.

Jones JC, Fruciano C, Hildebrand F, Toufalilia HA, Balfour NJ, Bork P и др. Состав кишечной микробиоты у медоносных пчел связан с экологическим ландшафтом. Ecol Evol. 2018; 8: 441–51.

PubMed Google ученый

68.

Guo Z, Zhang J, Wang Z, Ang KY, Huang S, Hou Q и др. Микробиота кишечника отличает больных подагрой от здоровых людей. Научный доклад 2016; 6: 20602.

CAS PubMed PubMed Central Google ученый

69.

Evans JD. Транскрипционные иммунные ответы личинок медоносной пчелы во время инвазии бактериальным патогеном, Paenibacillus larvae . J Invertebr Pathol. 2004; 85: 105–11.

CAS PubMed Google ученый

70.

Ильясов Р.А., Гайфуллина Л.Р., Салтыкова Е.С., Поскряков А.В., Николаенко А.Г. Дефенсины в противоинфекционной защите пчел. J Evol Biochem Physiol. 2013; 49: 1–9.

CAS Google ученый

71.

Колеоглу Г., Гудвин PH, Рейес-Кинтана М., Хамидуцзаман М.М.д, Гусман-Новоа Е. Varroa destructor паразитизм снижает концентрацию гемоцитов и экспрессию гена пропенолоксидазы у пчел из двух популяций. Parasitol Res. 2018; 117: 1175–83.

PubMed PubMed Central Google ученый

72.

Рэмси С.Д., Очоа Р., Баучан Дж., Гулбронсон С., Мауэри Дж. Д., Коэн А. и др. Varroa destructor питается в основном жировой тканью медоносных пчел, а не гемолимфой.

Услуги стерилизации медицинских изделий

Услуги по стерилизации медицинских изделий, стерилизация изделий медицинского назначения

Стерилизация медицинских изделий | ABM Technology

Централизованная стерилизационная — ЦКБ УДП РФ

Стерилизация одноразовых пластмассовых изделий мед. назначения

Этапы стерилизации одноразовых медицинских изделий

Преимущества газовой стерилизации в сравнении с другими видами

Изделия и инструменты, с которыми мы работаем

Цена и преимущества компании

Выбор метода низкотемпературной стерилизации для мед. изделий

специалист по дезинфекции — о радиационной обработке медицинских изделий — РТ на русском

Нужно ли стерилизовать мед [или можно ли его есть в сыром виде?] — Grampa’s Honey

Нужно ли стерилизовать мед?

Как стерилизовать мед дома

Какая температура убивает бактерии в меде?

Как удалить затвердевший мед?

Как очистить банку с медом?

Как удалить мед с пластика?

Что растворяет мед?

Стерилизация улей материал с двойной индуктивно связанной плазмой низкого давления

2.1. Пробоподготовка

2.1.1. Образцы пчелиного воска

2.1.2. Образцы древесины.

2.1.3. Стеклянные горки.

2.1.4. Образцы сот.

2.2. Подготовка и поддержание эндоспор

2.3. Нанесение суспензии спор на поверхности

2.4. Плазменный реактор

2,5. Определение температуры поверхности

2.6. Стерилизация в плазменном реакторе

2.7. Извлечение спор со стеклянных предметных стекол и прямое извлечение с восковых пластин

2,8. Извлечение спор с восковых поверхностей

2.9. Извлечение спор с деревянных поверхностей

2.10. Определение количества спор на образцах сот

3.1. Температура образца в DICP остается ниже точки плавления пчелиного воска в условиях, типичных для стерилизационных циклов.

3.2. Воск — это сложная поверхность.

3.3. Циклическая непрерывная плазменная обработка уничтожает споры более эффективно, чем импульсная плазменная обработка.

3.4. Плазма на основе водорода более эффективна в уничтожении спор по сравнению с плазмой на основе аргона / кислорода / азота

3.5. Большинство спор на восковых поверхностях погибает в течение первых секунд обработки плазмой.

3,6. Еще сложнее уничтожить споры на деревянных поверхностях по сравнению с воском.

3,7. Споры уничтожаются на сотах с помощью неразрушающей плазменной обработки.

Гамма-облученный мед безопаснее сырого меда и обладает такими же антибактериальными свойствами!

Стерилизация пищевых продуктов с помощью излучения!

Что такое гамма-облучение?

Не меняет ли гамма-излучение свойства меда?

Меняет ли гамма-облучение антибактериальные свойства меда?

Эффективно ли гамма-облучение при стерилизации меда?

Облучение, предложенное Ассоциацией пчеловодов Монтго, штат Пенсильвания

(PDF) Стерилизация материала улья двойной индуктивно связанной плазмой низкого давления

Новый пробиотический подход к борьбе с инфекцией личинок Paenibacillus у медоносных пчел

Добавить комментарий Отменить ответ

Рубрики